18F-AlF标记的多肽分子探针在PET肿瘤显像中的研究进展

韩静雅 陈旸 赵妍 赵新明

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18F-AlF标记的多肽分子探针在PET肿瘤显像中的研究进展

    通讯作者: 赵新明, xinm_zhao@163.com

Research progress of 18F-AlF-labeled peptide molecular probes in PET tumor imaging

    Corresponding author: Xinming Zhao, xinm_zhao@163.com
  • 摘要: 随着PET在临床中的广泛应用,18F-氟化铝(AlF)标记的多肽分子探针也备受关注。其标记方法简便易行,PET显像的灵敏度及空间分辨率高,可示踪多种生物靶点,从而为肿瘤的精准诊疗提供重要信息,且部分18F-AlF标记的多肽分子探针已进入临床研究阶段,具有良好的应用前景。笔者对18F-AlF标记的多肽生物靶向分子探针在PET肿瘤显像中的研究进展进行综述。
  • 图 1  DOTA、NOTA 和18F-AlF-NOTA化学结构图

    Figure 1.  Chemical structure diagrams of DOTA , NOTA and 18F-AlF-NOTA

  • [1] Richter S, Wuest F. 18F-labeled peptides: the future is bright[J/OL]. Molecules, 2014, 19(12): 20536−20556[2020-12-24]. https://www.mdpi.com/1420-3049/19/12/20536. DOI: 10.3390/ molecules191220536.
    [2] 张晓, 兰晓莉, 胡帆, 等. 点击化学在分子影像学中的应用和进展[J]. 国际放射医学核医学杂志, 2016, 40(3): 196−201. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2016.03.008.
    Zhang X, Lan XL, Hu F, et al. Applications and advances of click chemistry in molecular imaging[J]. Int J Radiat Med Nucl Med, 2016, 40(3): 196−201. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2016.03.008.
    [3] Kumar K, Ghosh A. 18F-AlF labeled peptide and protein conjugates as positron emission tomography imaging pharmaceuticals[J]. Bioconjug Chem, 2018, 29(4): 953−975. DOI: 10.1021/acs.Bioconjchem.7b00817.
    [4] Cleeren F, Lecina J, Bridoux J, et al. Direct fluorine-18 labeling of heat-sensitive biomolecules for positron emission tomography imaging using the Al18F-RESCA method[J]. Nat Protoc, 2018, 13(10): 2330−2347. DOI: 10.1038/s41596-018-0040-7.
    [5] Liu SL, Liu HG, Jiang H, et al. One-step radiosynthesis of 18F-AlF-NOTA-RGD2 for tumor angiogenesis PET imaging[J]. Eur J Nucl Med Mol Imaging, 2011, 38(9): 1732−1741. DOI: 10.1007/s00259-011-1847-4.
    [6] Wan WX, Guo N, Pan DH, et al. First experience of 18F-alfatide in lung cancer patients using a new lyophilized kit for rapid radiofluorination[J]. J Nucl Med, 2013, 54(5): 691−698. DOI: 10.2967/jnumed.112.113563.
    [7] Zhang H, Liu N, Gao S, et al. Can an 18F-ALF-NOTA-PRGD2 PET/CT scan predict treatment sensitivity to concurrent chemoradiotherapy in patients with newly diagnosed glioblastoma?[J]. J Nucl Med, 2016, 57(4): 524−529. DOI: 10.2967/jnumed.115.165514.
    [8] Li L, Ma L, Shang DP, et al. Pretreatment PET/CT imaging of angiogenesis based on 18F-RGD tracer uptake may predict antiangiogenic response[J]. Eur J Nucl Med Mol Imaging, 2019, 46(4): 940−947. DOI: 10.1007/s00259-018-4143-8.
    [9] Pan DH, Yan YJ, Yang RH, et al. PET imaging of prostate tumors with 18F-Al-NOTA-MATBBN[J]. Contrast Media Mol Imaging, 2014, 9(5): 342−348. DOI: 10.1002/cmmi.1583.
    [10] Carlucci G, Kuipers A, Ananias HJK, et al. GRPR-selective PET imaging of prostate cancer using [18F]-lanthionine-bombesin analogs[J]. Peptides, 2015, 67: 45−54. DOI: 10.1016/j.peptides.2015.03.004.
    [11] Ferlay J, Colombet M, Soerjomataram I, et al. Cancer incidence and mortality patterns in Europe: estimates for 40 countries and 25 major cancers in 2018[J]. Eur J Cancer, 2018, 103: 356−387. DOI: 10.1016/j.ejca.2018.07.005.
    [12] Boschi S, Lee JT, Beykan S, et al. Synthesis and preclinical evaluation of an Al18F radiofluorinated GLU-UREA-LYS(AHX)-HBED-CC PSMA ligand[J]. Eur J Nucl Med Mol Imaging, 2016, 43(12): 2122−2130. DOI: 10.1007/s00259-016-3437-y.
    [13] Liu TL, Liu C, Xu XX, et al. Preclinical evaluation and pilot clinical study of Al18F-PSMA-BCH for prostate cancer PET imaging[J]. J Nucl Med, 2019, 60(9): 1284−1292. DOI: 10.2967/jnumed.118.221671.
    [14] Hope TA, Bergsland EK, Bozkurt MF, et al. Appropriate use criteria for somatostatin receptor PET imaging in neuroendocrine tumors[J]. J Nucl Med, 2018, 59(1): 66−74. DOI: 10.2967/jnumed.117.202275.
    [15] Long TT, Yang NG, Zhou M, et al. Clinical application of 18F-AlF-NOTA-octreotide PET/CT in combination with 18F-FDG PET/CT for imaging neuroendocrine neoplasms[J]. Clin Nucl Med, 2019, 44(6): 452−458. DOI: 10.1097/RLU.0000000000002578.
    [16] Pauwels E, Cleeren F, Tshibangu T, et al. [18F]AlF-NOTA-octreotide PET imaging: biodistribution, dosimetry and first comparison with [68Ga]Ga-DOTATATE in neuroendocrine tumour patients[J]. Eur J Nucl Med Mol Imaging, 2020, 47(13): 3033−3046. DOI: 10.1007/s00259-020-04918-4.
    [17] 邢宇, 赵新明. 放射性核素标记HER2亲和体分子探针精准诊疗的研究进展[J]. 国际放射医学核医学杂志, 2016, 40(2): 139−144. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2016.02.011.
    Xing Y, Zhao XM. Advances in radionuclide-labeled HER2 affibody molecular probes for precise diagnosis and treatment[J]. Int J Radiat Med Nucl Med, 2016, 40(2): 139−144. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2016.02.011.
    [18] Zhang JM, Zhao XM, Wang SJ, et al. Monitoring therapeutic response of human ovarian cancer to trastuzumab by SPECT imaging with 99mTc-peptide-ZHER2:342[J]. Nucl Med Biol, 2015, 42(6): 541−546. DOI: 10.1016/j.nucmedbio.2015.02.002.
    [19] Jiao HL, Zhao XM, Liu JH, et al. In vivo imaging characterization and anticancer efficacy of a novel HER2 affibody and pemetrexed conjugate in lung cancer model[J]. Nucl Med Biol, 2019, 68/69: 31−39. DOI: 10.1016/j.nucmedbio.2018.11.004.
    [20] Han JY, Zhao Y, Zhao XM, et al. Therapeutic efficacy and imaging assessment of the HER2-targeting chemotherapy drug ZHER2: V2-pemetrexed in lung adenocarcinoma xenografts[J]. Invest New Drugs, 2020, 38(4): 1031−1043. DOI: 10.1007/s10637-019-00876-3.
    [21] Heskamp S, Laverman P, Rosik D, et al. Imaging of human epidermal growth factor receptor type 2 expression with 18F-labeled affibody molecule ZHER2:2395 in a mouse model for ovarian cancer[J]. J Nucl Med, 2012, 53(1): 146−153. DOI: 10.2967/jnumed.111.093047.
    [22] Glaser M, Iveson P, Hoppmann S, et al. Three methods for 18F labeling of the HER2-binding affibody molecule ZHER2: 2891 including preclinical assessment[J]. J Nucl Med, 2013, 54(11): 1981−1988. DOI: 10.2967/jnumed.113.122465.
    [23] Xu YP, Bai ZC, Huang QH, et al. PET of HER2 expression with a novel 18FAl labeled affibody[J/OL]. J Cancer, 2017, 8(7): 1170−1178[2020-12-24]. https://www.jcancer.org/v08p1170.htm. DOI: 10.7150/jca.18070.
    [24] Loktev A, Lindner T, Mier W, et al. A tumor-imaging method targeting cancer-associated fibroblasts[J]. J Nucl Med, 2018, 59(9): 1423−1429. DOI: 10.2967/jnumed.118.210435.
    [25] Kratochwil C, Flechsig P, Lindner T, et al. 68Ga-FAPI PET/CT: tracer uptake in 28 different kinds of cancer[J]. J Nucl Med, 2019, 60(6): 801−805. DOI: 10.2967/jnumed.119.227967.
    [26] Watabe T, Liu YW, Kaneda-Nakashima K, et al. Theranostics targeting fibroblast activation protein in the tumor stroma: 64Cu- and 225Ac-labeled FAPI-04 in pancreatic cancer xenograft mouse models[J]. J Nucl Med, 2020, 61(4): 563−569. DOI: 10.2967/jnumed.119.233122.
    [27] Lindner T, Altmann A, Krämer S, et al. Design and development of 99mTc-labeled FAPI tracers for SPECT imaging and 188Re therapy[J]. J Nucl Med, 2020, 61(10): 1507−1513. DOI: 10.2967/jnumed.119.239731.
    [28] Giesel FL, Adeberg S, Syed M, et al. FAPI-74 PET/CT using either 18F-AlF or cold-kit 68Ga-labeling: biodistribution, radiation dosimetry, and tumor delineation in lung cancer patients[J]. J Nucl Med, 2021, 62(2): 201−207. DOI: 10.2967/jnumed.120.245084.
    [29] Calais J, Mona CE. Will FAPI PET/CT replace FDG PET/CT in the next decade? point—an important diagnostic, phenotypic and biomarker role[J]. AJR Am J Roentgenol, 2021, 216(2): 305−306. DOI: 10.2214/AJR.20.24302.
  • [1] 赵龙罗作明孙龙吴华陈皓鋆 . 新型αvβ3和Neuropilin-1双靶点正电子成像探针18F-FAl-NOTA-RGD-ATWLPPR用于脑胶质瘤的PET显像研究. 国际放射医学核医学杂志, 2017, 41(4): 233-240. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2017.04.001
    [2] 刘晓梅魏玲格张芳 . 以血管生成为分子靶点的放射性核素显像分子探针在肿瘤个体化用药中的应用. 国际放射医学核医学杂志, 2017, 41(5): 363-369. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2017.05.011
    [3] 贾建华段玉清侯文彬李祎亮 . 靶向Tau蛋白PET分子探针的研究进展. 国际放射医学核医学杂志, 2020, 44(5): 317-322. doi: 10.3760/cma.j.cn121381-201910028-00031
    [4] 林潇唐明灯 . 靶向表皮生长因子受体分子探针研究进展. 国际放射医学核医学杂志, 2015, 39(1): 85-90. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2015.01.018
    [5] 张依凡朱星星汪世存谢强 . PET分子探针在类风湿关节炎中的研究进展. 国际放射医学核医学杂志, 2022, 46(4): 1-5. doi: 10.3760/cma.j.cn121381-202104021-00169
    [6] 张晓兰晓莉胡帆张永学 . 点击化学在分子影像学中的应用和进展. 国际放射医学核医学杂志, 2016, 40(3): 196-201. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2016.03.008
    [7] 孔艳艳管一晖吴平 . PET分子探针在阿尔茨海默病早期诊断中的研究进展. 国际放射医学核医学杂志, 2012, 36(5): 257-263. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2012.05.001
    [8] 袁洪卫林汉 . 毒蕈碱乙酰胆碱受体显像的分子探针. 国际放射医学核医学杂志, 1996, 20(3): 104-106.
    [9] 郑玉民颜珏18F-氟脱氧葡萄糖PET在恶性淋巴瘤中的应用. 国际放射医学核医学杂志, 2008, 32(6): 347-351.
    [10] 郑雨婷兰晓莉张永学 . 肿瘤免疫治疗的分子影像监测. 国际放射医学核医学杂志, 2021, 45(3): 176-181. doi: 10.3760/cma.j.cn121381-202005003-00036
    [11] 刘纯宝兰晓莉张永学 . 粥样硬化易损斑块传统影像与分子影像检测与评价现状. 国际放射医学核医学杂志, 2014, 38(2): 101-105, 134. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2014.02.008
    [12] 邢岩赵晋华 . 靶向免疫检查点PD-1/PD-L1的肿瘤分子影像学研究进展. 国际放射医学核医学杂志, 2019, 43(4): 356-360. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2019.04.010
    [13] 孙建鹰杜明华18F-氟脱氧葡萄糖显像在肺癌治疗中应用价值的. 国际放射医学核医学杂志, 2008, 32(5): 290-294.
    [14] 谭业颖18F-氟脱氧胸苷PET的肿瘤分子显像研究进展. 国际放射医学核医学杂志, 2007, 31(1): 6-8,20.
    [15] 张姝靳晓娜党永红霍力李方 . Notch信号通路小分子抑制剂DAPT的11C标记及在正常兔体内的初步动态显像研究. 国际放射医学核医学杂志, 2019, 43(1): 47-52. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2019.01.009
    [16] 渠浩王振军陈大志王铁韩进杜燕夫李敏哲18F-氟代脱氧葡萄糖正电子放射导向手术在结直肠癌治疗中的初步应用. 国际放射医学核医学杂志, 2006, 30(3): 145-147.
    [17] 马强高红林宋娜玲 . 下肢深静脉血栓形成的分子影像学进展. 国际放射医学核医学杂志, 2014, 38(5): 315-317, 336. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2014.05.009
    [18] 宗佳滨兰晓莉张永学 . 阿尔茨海默病分子影像探针的研究进展. 国际放射医学核医学杂志, 2022, 46(1): 35-41. doi: 10.3760/cma.j.cn121381-202101045-00129
    [19] 曹丰陈跃 . 双模式分子影像探针研究进展. 国际放射医学核医学杂志, 2010, 34(1): 1-5. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2010.01.001
    [20] 乔文礼赵晋华18F-氟脱氧葡萄糖PET在靶区确定和放疗计划制定中的价值. 国际放射医学核医学杂志, 2007, 31(6): 345-349.
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出版历程
  • 收稿日期:  2020-12-25
  • 网络出版日期:  2022-05-06
  • 刊出日期:  2022-03-25

18F-AlF标记的多肽分子探针在PET肿瘤显像中的研究进展

    通讯作者: 赵新明, xinm_zhao@163.com
  • 1. 河北医科大学第四医院核医学科,石家庄 050011
  • 2. 河北医科大学第四医院肿瘤内科,石家庄 050011

摘要: 随着PET在临床中的广泛应用,18F-氟化铝(AlF)标记的多肽分子探针也备受关注。其标记方法简便易行,PET显像的灵敏度及空间分辨率高,可示踪多种生物靶点,从而为肿瘤的精准诊疗提供重要信息,且部分18F-AlF标记的多肽分子探针已进入临床研究阶段,具有良好的应用前景。笔者对18F-AlF标记的多肽生物靶向分子探针在PET肿瘤显像中的研究进展进行综述。

English Abstract

  • PET是核医学领域较先进的分子影像学技术,可从分子水平动态观察受体、基因表达和细胞代谢等的变化情况。正电子放射性核素显像剂与PET技术结合可实时、定量地对病变相关生物靶点进行分析,将肿瘤生物学行为可视化。近年来,尽管11C、68Ga、64Cu、89Zr及124I标记的正电子分子探针在临床中的应用逐渐增多,但18F标记的分子探针具有较高的显像灵敏度及空间分辨率,故更适合用于PET肿瘤显像。

    • 目前,18F标记多肽分子主要有3种方法:18F标记辅基法、点击化学标记法和 18F-氟化铝(18F-AlF)络合标记法[1]。而18F亲核取代反应不适合多肽类分子标记。

    • 用于18F标记的辅基主要有2种:胺反应辅基及硫醇反应辅基[1]。胺反应辅基2-18F-氟丙酸对-硝基苯酯(nitrophenyl 2-[18F]fluoropropionate, 18F-NFP)、N-琥珀酰亚胺-4-18F-氟苯甲酸酯(N-succinimidyl-4-[18F]fluorobenzoate, 18F-SFB)可用于精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸(Arg-Gly-Asp, RGD)及肽类的18F标记;基于硫醇反应18F标记的马来酰亚胺的各种辅基,如N-[6-(4-[18F]氟苯亚甲基)氨基氧己基]马来酰亚胺(N-[6-(4-[18F]fluorobenzylidene) aminooxyhexyl] maleimide, 18F-FBAM)、N-2-(4-[18F]氟苯甲酰氨基)乙基马来酰亚胺(N-[2-(4-[18F]fluorobenzamido)ethyl]maleimide, 18F-FBEM)、18F-FDG-马来酰亚胺己基肟(maleimidehexyloxime,MHO),可用于含半胱氨酸或半胱氨酸残基的肽类标记。但基于辅基的标记过程复杂,反应时间长,标记率低,且引入的辅基较大,影响标记物的活性。

    • 基于点击化学的18F标记简便,适合快速标记大量化合物,极具应用前景。点击化学在分子影像学中应用较为广泛的有铜催化的叠氮和端炔的环加成反应(Cu-catalyzed azide- alkyne cycloaddition, CuAAC)、[3+2]叠氮-炔烃环加成反应(strain-promoted azide-alkyne cycloaddition, SPAAC)、基于巯基的点击反应和Diels-Alder(D-A)反应[2]。其中,CuAAC应用最早也最经典,但由于Cu(Ⅰ)催化剂有细胞毒性、易诱发病毒或寡核苷酸降解,限制了其临床应用。近年来,点击化学在分子影像学领域进展迅速,但需多步骤合成,部分标记产物的产率及体内稳定性尚不理想,还需要进一步完善。

    • 18F-AlF络合物之间氟键能量高、热力学性质稳定,且标记过程简便、反应迅速、产率高、稳定性好,易于临床推广。18F-AlF标记的螯和基团主要有DTPA、1, 4, 7, 10-四氮杂环十二烷-1, 4, 7, 10-四乙酸(1, 4, 7, 10- tetraazacyc-lododecane-1, 4, 7, 10-tetraacetic acid,DOTA)和1, 4, 7-三氮杂环壬烷-1, 4, 7-三乙酸(1, 4, 7-triazacyclononane-1, 4, 7-triacetic acid,NOTA)等,与DTPA相比,以NOTA为螯和基团的标记物稳定性更好;与DOTA相比,NOTA可避免DOTA多余的供体原子竞争氟化物与Al3+的配位[3],更适于Al3+的配位(图1),故NOTA与18F-AlF的连接更稳定,更利于标记。但18F-AlF-NOTA的标记方法需在高温条件下进行,不适于标记热敏分子。Cleeren等[4]改变螯和基团,在室温下构建了18F-AlF-约束络合剂(restrained complexing agent,RESCA)-人表皮生长因子受体2(human epidermal growth factor receptor 2,HER2)亲合体(PEP04314),突破了18F-AlF-NOTA需高温反应的限制,制备更简单,可用于18F标记热敏生物分子的研发。

      图  1  DOTA、NOTA 和18F-AlF-NOTA化学结构图

      Figure 1.  Chemical structure diagrams of DOTA , NOTA and 18F-AlF-NOTA

    • 整合素αvβ3在新生血管内皮细胞和多种肿瘤细胞表面高表达,是肿瘤诊疗中极具潜力的分子靶点。RGD可特异性地与整合素αvβ3结合,为RGD分子探针的研究奠定了基础。Liu等[5]首先应用18F-AlF对NOTA-RGD共轭物进行标记,并用于肿瘤血管显像,结果表明,该标记方法简便,micro-PET 显像显示出较高的T/NT,并且该分子探针在体内的清除速率快,这表明18F-AlF-NOTA标记方法在临床上具有应用推广的可行性。18F-AlF-阿法肽(Alfatide I)也称18F-AlF-NOTA- PRGD2,其冻干试剂盒的成功研制是整合素αvβ3受体显像的重大临床突破。Wan等[6]采用18F-AlF-NOTA-PRGD2进行PET/CT显像,结果显示,其可以特异性显示肺癌患者整合素αvβ3的表达,可用于肿瘤诊断及针对新生血管靶向治疗的疗效评价。随后,18F-AlF-NOTA-PRGD2 PET/CT显像在肺癌淋巴结转移、胶质母细胞瘤、食管癌的诊断以及抗血管生成药阿帕替尼的疗效评价中显示出巨大的临床应用潜力[7-8]

    • 胃泌素释放肽受体(gastrin releasing peptide receptor, GRPR)在多种肿瘤(如前列腺癌、乳腺癌和小细胞肺癌)中高表达,是放射性核素显像及治疗的重要靶点。利用放射性核素标记的GRPR的配体可与受体特异性结合,进而对肿瘤进行显像。Pan等[9]评估了GRPR靶向显像剂 18F-AlF-NOTA-甘氨酸-甘氨酸-甘氨酸-精氨酸-天冬氨酸-天冬酰胺-D-苯丙氨酸-谷胺酰胺-色氨酸-丙氨酸-缬氨酸-甘氨酸-组氨酸-亮氨酸-氨基乙基(Gly-Gly-Gly-Arg-Asp-Asn-D-Phe-Gln-Trp-Ala-Val-Gly-His-Leu-NHCH2CH3,MATBBN)在前列腺癌PET显像中的潜力,研究发现,与18F-FDG相比,18F-AlF-NOTA-MATBBN与前列腺癌细胞PC-3的结合特异性更强,但其在磷酸盐缓冲液及人血清中的体外稳定性差,存在时间(2 h)较短。Carlucci等[10]研究发现,GRPR特异性显像剂18F-AlF-NOTA-4,7-硫化双丙氨酸-蛙皮素和18F-AlF-NOTA-2,6-硫化双丙氨酸-蛙皮素可与人前列腺癌细胞PC-3移植瘤特异性结合。并且2种示踪剂分别在生理盐水和血清中孵育4 h后,体外稳定性均>90%,体内稳定性均>75%。

    • 前列腺癌是男性最常见的恶性肿瘤[11], PSMA在大多数前列腺癌细胞中均特异性高表达,是显像和治疗中的重要靶点。对PSMA特异性结合分子进行放射性核素标记后可进行核医学显像。近年来,研究较多的PMSA分子探针有68Ga标记的PSMA-11、PSMA-617、PSMA-I&T和三羟基吡啶酮(trishy droxypyridihone,THP)-PSMA及18F标记的DCFBC和PSMA-1007。 但由于68Ga的半衰期短、能量稍低、成本高以及68Ge/68Ga发生器提供的剂量有限,其使用受到限制,而18F标记的PMSA分子探针的应用却越来越广泛。Boschi等[12]18F-AlF-PSMA-11进行临床前评价,从小鼠PET生物学分布数据推断了18F-AlF-PSMA-11的吸收剂量,指出肾脏是剂量限制器官,保守估算出人的最大耐受剂量为564 MBq,为临床应用奠定了基础。Liu等[13]完成18F-AlF-PSMA-北京肿瘤医院(Beijing Carcinoma Hospital,BCH)的制备,并进行安全性检测,在前列腺癌细胞荷瘤裸鼠中进行显像的基础上完成临床转化,结果表明, 18F-AlF-PSMA-BCH的制备简单,安全性好, micro-PET显像可清楚地区分小鼠前列腺22RV1肿瘤(PSMA阳性)和前列腺PC-3肿瘤(PSMA阴性);并在11例前列腺癌患者中探测出37个PSMA高表达病灶,成功完成18F-AlF-PSMA-BCH分子探针的临床转化。后续该探针逐渐应用于临床,对前列腺癌患者的精准诊疗具有较好的临床应用价值。

    • 生长抑素(somatostatin, SST)由神经内分泌细胞、免疫细胞及炎症细胞产生,在脑、胰腺及胃肠道等器官中分布较为广泛。SSAs主要有奥曲肽(octreotide, OC)、兰瑞肽及伐普肽等。SST及SSAs的生物学活性主要是通过靶向细胞膜上的生长抑素受体(somatostatin receptors, SSTR)介导发挥作用。SSTR是一种细胞膜糖蛋白,在神经内分泌肿瘤、中枢神经系统肿瘤、乳腺癌、肺癌和其他组织的肿瘤中均高表达。放射性核素标记的SSAs可用于SSTR表达阳性的肿瘤的显像[14]

      神经内分泌肿瘤(neuroendocrine tumors,NETs)的发病率逐年升高,大多数NETs分化良好、生长缓慢、葡萄糖代谢水平很低,18F-FDG显像特异性欠佳,早期诊断较为困难。该肿瘤高表达SSTR(尤其是SSTR-2),其靶向PET显像剂发展迅速。近年来,68Ga标记SSAs的技术不断发展,已取代111In-DTPA-OC成为SSTR显像的“金标准”[14],在临床上得到应用的示踪剂主要有68Ga-1,4,7,10-四氮杂环十二烷-1,4,7,10-四乙酸-D-苯丙氨酸1-酪氨酸3-苏氨酸8-奥曲肽(68Ga-DOTA-Tyr(3)-octreotate,68Ga-DOTATATE)、68Ga-1,4,7,10-四氮杂环十二烷-1,4,7,10-四乙酸-酪氨酸3-奥曲肽(DOTA-Tyr(3)-octreotide,DOTATOC)及68Ga-1,4,7,10-四氮杂环十二烷-1,4,7,10-四乙酸-1-萘丙氨酸3-奥曲肽(DOTA-Nal(3)-octreotide,DOTANOC)。然而因68Ge/68Ga发生器的日产量较低,68Ga 标记SSAs PET显像的临床应用受到限制。近年来18F标记的SSAs的临床应用逐渐开展。Long等[15]在Ⅰ期临床试验中将[18F]AlF-NOTA-OC与18F-FDG显像进行对比,结果表明,18F-AlF-NOTA-OC在安全性、生物学分布特性及剂量学研究中显示出明显优势,且肿瘤摄取及T/NT均较高。Pauwels等[16]通过前瞻性试验对18F-AlF-NOTA-OC的安全性、剂量测定、生物学分布、药代动力学和靶向性进行研究,并在6例NETs患者中将其与68Ga-DOTATATE显像进行比较,结果表明,18F-AlF-NOTA-OC安全性、耐受性良好,显示出较好的体内分布、药代动力学性质及肿瘤靶向性,对病变的检出率与68Ga-DOTATATE相当。鉴于18F适宜的半衰期及较高的空间分辨率,18F-AlF-NOTA-OC有望成为诊断NETs的显像剂。

    • HER2是酪氨酸激酶受体蛋白,在肿瘤细胞分化、增殖、肿瘤转移和预后中起着关键作用。放射性核素标记的HER2亲合体可以与HER2高表达肿瘤靶向特异性结合,从而实现实时监测原发灶、转移灶和治疗过程中HER2的动态变化,对HER2阳性肿瘤的诊断、治疗及疗效监测具有重要意义[17-20]。Heskamp等[21]报道了NOTA(5)-ZHER2:23918F-AlF一步标记法及其在人卵巢癌细胞SKOV3荷瘤裸鼠体内分布的研究,结果显示,与68Ga和111In标记的HER2亲合体相比,18F-AlF-NOTA(5)-ZHER2:239在血液中的清除速率更快,肿瘤/血液比值更高,其显像性能更具优势且不易脱标。Glaser等[22]对比分析氟化硅受体方法(18F-silicon-fluoride acceptor approach,18F-SiFA)、18F-AlF-NOTA和4-18F-氟苯甲醛3种方法标记ZHER2:2891亲合体的PET/CT显像效果,结果显示,与其他2种标记方法相比,18F-AlF标记的ZHER2:2891在肾脏中的浓聚较明显,且在HER2表达阳性的荷瘤裸鼠显像中显示出较高的肿瘤/肌肉和肿瘤/肝脏比值,更适于肿瘤显像。Xu等[23]研究HER2特异性显像剂18F-AlF-NOTA-马来酰亚胺(maleimide, MAL)-MZHER2:342在不同HER2表达水平的肿瘤细胞荷瘤裸鼠中的显像效果,结果表明, 18F-AlF-NOTA-MAL-MZHER2:342合成简便,药代动力学性质良好,在HER2阳性的人卵巢癌细胞SKOV3及人乳腺癌细胞JIMT-1荷瘤裸鼠中的显像效果较好,是极具临床应用潜力的HER2靶向分子探针。

    • 肿瘤相关成纤维细胞 (cancer-associated fibroblast, CAF)及胞外纤维细胞是实体肿瘤的重要组成成分。CAF在90%以上的肿瘤中高表达,其通过分泌成纤维细胞活化蛋白(fibroblast activation protein, FAP)促进肿瘤生长和转移[24]。放射性核素标记的FAPI已用于多种肿瘤的显像研究。Kratochwil等[25]68Ga-FAPI-04对80例肿瘤患者行PET/CT显像,结果显示,该分子探针检测出28种肿瘤的原发灶或转移灶,这为肿瘤的无创诊断、分期及放射性配体治疗开辟了新的应用前景。随后,68Ga、64Cu、225Ac和99Tcm等放射性核素标记的FAPI相继在国内外科研及临床工作中不断被研发[26-27]18F适宜的半衰期使其在实际大规模生产应用中具有更强的可行性。Giesel等[28]分别用18F-AlF、68Ga标记NOTA-FAPI 74并对10例肺癌患者进行PET/CT显像,结果表明,18F-AlF-NOTA-FAPI 74 PET/CT图像的对比度和空间分辨率更高,并且对患者的辐射剂量低,更适于临床应用。虽然18F-AlF标记的FAPI在多种肿瘤中的显像效果较好,但鉴于伤口愈合过程中成纤维细胞活化、慢性炎症相关基质重塑以及肝和肺纤维化等原因,其诊断及疗效评价的特异性会降低。另外,18F-AlF标记的FAPI的临床应用成本较高,在获得美国国家食品药品监督管理局批准过程中程序复杂,故在短期内并不能取代18F-FDG成为广谱肿瘤显像剂以广泛应用于临床[29]

    • 18F-AlF标记的PET显像剂的开发与应用备受关注,部分已在临床研究中显示出精准的肿瘤检测效果。18F-AlF络合标记方法简便易行,在合适的pH值、温度及有机溶剂条件下能一步完成,临床应用可行性强。除NOTA螯合基团外,还有多种分子结构适用于18F-AlF络合物的标记(如RESCA),突破了需高温条件标记的限制,显示出较好的临床应用前景。除肿瘤显像外,18F-AlF标记多种正电子显像剂在心血管疾病及感染性病变中的应用也在进一步探索,具有良好的发展潜力。

      利益冲突 所有作者声明无利益冲突

      作者贡献声明 韩静雅负责综述的选题与撰写;陈旸、赵妍负责综述的审阅;赵新明负责综述的选题指导与审阅、最终版本的修订

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