HER2的表达及其分子影像的研究进展

汪文霞 兰晓莉 张永学

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HER2的表达及其分子影像的研究进展

    通讯作者: 张永学, zhyx1229@163.com
  • 基金项目:

    国家自然科学基金重点项目 31630049

Research and development of HER2 expression molecular imaging

    Corresponding author: Yongxue Zhang, zhyx1229@163.com
  • Fund Project: Key Program of National Natural Science Foundation of China 31630049

  • 摘要: 人表皮生长因子受体2(HER2)是一种具有酪氨酸激酶活性的跨膜受体,同时也是一种高表达于各种癌细胞的生物标志物。高表达HER2的肿瘤往往预后不良。HER2分子影像主要是利用放射性核素、磁性材料、发光物质等标记配体能与HER2特异性结合的特性,对患者体内HER2高表达病灶进行显像,从而协助HER2阳性疾病的诊断,筛选出抗HER2治疗有效的患者,并可用于疗效评估,是近年来肿瘤精准医疗研究的热点之一。
  • [1] Schechter AL, Stern DF, Vaidyanathan L, et al. The neu oncogene:an erb-B-related gene encoding a 185, 000-Mr tumour antigen[J].Nature, 1984, 312(5994): 513-516. doi: 10.1038/312513a0
    [2] Siegel R, Naishadham D, Jemal A. Cancer statistics, 2013[J]. CA Cancer J Clin, 2013, 63(1): 11-30. DOI:10.3322/caac.21166.
    [3] 刘芳, 唐光才.乳腺癌影像诊断的研究现状[J].国际医学放射学杂志, 2013, 36(6): 533-537. DOI:10.3874/j.issn.1674-1897.2013. 06.Z0605.
    LiuF, Tang GC. The current status of imaging diagnosis of breast cancer[J]. Int J Med Radiol, 2013, 36(6): 533-537. doi: 10.3874/j.issn.1674-1897.2013.06.Z0605
    [4] King CR, Kraus MH, Aaronson SA. Amplification of a novel v-erbB-related gene in a human mammary carcinoma[J]. Science, 1985, 229(4717): 974-976. DOI:10.1126/science.2992089.
    [5] Slamon DJ, Clark GM, Wong SG, et al. Human breast cancer:correlation of relapse and survival with amplification of the HER-2/neu oncogene[J]. Science, 1987, 235(4785): 177-182. DOI:10. 1126/science.3798106.
    [6] Ross JS, Slodkowska EA, Symmans WF, et al. The HER-2 receptor and breast cancer:ten years of targeted anti-HER-2 therapy and personalized medicine[J]. Oncologist, 2009, 14(4): 320-368. DOI:10.1634/theoncologist.2008-0230.
    [7] Fu W, Lobocki CA, Silberberg BK, et al. Molecular markers in Paget disease of the breast[J]. J Surg Oncol, 2001, 77(3): 171-178. DOI:10.1002/jso.1090.
    [8] Debska-Szmich S, Krakowska M, Czernek U, et al. The role of preoperative systemic treatment in patients with breast cancer[J]. Contemp Oncol(Pozn), 2016, 20(2): 93-101. DOI:10.5114/wo.2016. 60067.
    [9] Zhang B, Cai FF, Zhong XY. An overview of biomarkers for the ovarian cancer diagnosis[J]. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol, 2011, 158(2): 119-123. DOI:10.1016/j.ejogrb.2011.04.023.
    [10] Corney DC, Hwang CI, Matoso A, et al. Frequent downregulation of miR-34 family in human ovarian cancers[J]. Clin Cancer Res, 2010, 16(4): 1119-1128. DOI:10.1158/1078-0432.CCR-09-2642.
    [11] Verri E, Guglielmini P, Puntoni M, et al. HER2/neu oncoprotein overexpression in epithelial ovarian cancer:evaluation of its prevalence and prognostic significance.Clinical study[J]. Oncology, 2005, 68(2/3): 154-161. DOI:10.1159/000086958.
    [12] Tanabe H, Nishii H, Sakata A, et al. Overexpression of HER-2/neu is not a risk factor in ovarian clear cell adenocarcinoma[J]. Gynecol Oncol, 2004, 94(3): 735-739. DOI:10.1016/j.ygyno.2004.05.055.
    [13] Mano MS, Awada A, Di LA, et al. Rates of topoisomerase Ⅱ-alpha and HER-2 gene amplification and expression in epithelial ovarian carcinoma[J]. Gynecol Oncol, 2004, 92(3): 887-895. DOI:10.1016/j.ygyno.2003.12.010.
    [14] Bookman MA, Darcy KM, Clarke-Pearson D, et al. Evaluation of monoclonal humanized anti-HER2 antibody, trastuzumab, in patients with recurrent or refractory ovarian or primary peritoneal carcinoma with overexpression of HER2:a phase II trial of the Gynecologic Oncology Group[J]. J Clin Oncol, 2003, 21(2): 283-290. DOI:10.1200/JCO.2003.10.104.
    [15] Tuefferd M, Couturier J, Penault-Llorca F, et al. HER2 status in ovarian carcinomas:a multicenter GINECO study of 320 patients[J/OL]. PLoS One, 2007, 2(11): 1138[2016-08-03]. 10.1371/journal.pone.0001138" target="_blank">http://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0001138. DOI:10. 1371/journal.pone.0001138.
    [16] Suo Z, Karbovo E, Karbove K, et al. Papillary serous carcinoma of the ovary:an ultrastructural and immunohistochemical study[J]. Ultrastruct Pathol, 2004, 28(3):141-147. DOI:10.1080/01913120490475716.
    [17] O′Neill CJ, Deavers MT, Malpica A, et al. An immunohistochemical comparison between low-grade and high-grade ovarian serous carcinomas:significantly higher expression of p53, MIB1, BCL2, HER-2/neu, and C-KIT in high-grade neoplasms[J]. Am J Surg Pathol, 2005, 29(8): 1034-1041.
    [18] Wang D, Zhu H, Ye Q, et al. Prognostic Value of KIF2A and HER2-Neu Overexpression in Patients with Epithelial Ovarian Cancer[J/OL]. Medicine(Baltimore), 2016, 95(8): 2803[2016-08-03]. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4779007/.DOI:10.1097/MD.0000000000002803.
    [19] Chen WQ, Zheng RS, Zhang SW, et al. Annual report on status of cancer in China, 2010[J]. Chin J Cancer Res, 2014, 26(1): 48-58.DOI:10.3978/j.issn.1000-9604.2014.01.08.
    [20] Abrahão-Machado LF, Jácome AA, Wohnrath DR, et al. HER2 in gastric cancer:comparative analysis of three different antibodies using whole-tissue sections and tissue microarrays[J]. World J Gastroenterol, 2013, 19(38): 6438-6446. DOI:10.3748/wjg.v19.i38. 6438.
    [21] Bang YJ, Van Cutsem E, Feyereislova A, et al. Trastuzumab in combination with chemotherapy versus chemotherapy alone for treatment of HER2-positive advanced gastric or gastro-oesophageal junction cancer(ToGA):a phase 3, open-label, randomised controlled trial[J]. Lancet, 2010, 376(9742): 687-697. DOI:10.1016/S0140-6736(10)61121-X.
    [22] Liang JW, Zhang JJ, Zhang T, et al. Clinicopathological and prognostic significance of HER2 overexpression in gastric cancer:a meta-analysis of the literature[J]. Tumour Biol, 2014, 35(5): 4849-4858. DOI:10.1007/s13277-014-1636-3.
    [23] Moelans CB, Milne AN, Morsink FH, et al. Low frequency of HER2 amplification and overexpression in early onset gastric cancer[J].Cell Oncol(Dordr), 2011, 34(2): 89-95. DOI:10.1007/s13402-011-0021-0.
    [24] Chen C, Yang JM, Hu TT, et al. Prognostic role of human epidermal growth factor receptor in gastric cancer:a systematic review and meta-analysis[J]. Arch Med Res, 2013, 44(5): 380-389. DOI:10.1016/j.arcmed.2013.07.001.
    [25] Fisher SB, Fisher KE, Squires MH 3rd, et al. HER2 in resected gastric cancer:Is there prognostic value?[J]. J Surg Oncol, 2014, 109(2): 61-66. DOI:10.1002/jso.23456.
    [26] Shen GS, Zhao JD, Zhao JH, et al. Association of HER2 status with prognosis in gastric cancer patients undergoing R0 resection:A large-scale multicenter study in China[J]. World J Gastroenterol, 2016, 22(23): 5406-5414. DOI:10.3748/wjg.v22.i23.5406.
    [27] 任新瑜, 尹玉峰, 高洁, 等.中国人群胰腺癌与胃癌HER2/neu基因表达[J].协和医学杂志, 2012, 3(1): 21-25. DOI:10.3969/j.issn.1674-9081.2012.01.006.Ren
    XY, Yin YF, Gao J, et al. Detection of HER2/neu Gene in Pancreatic and Gastric Adenocarcinoma among Chinese Patients[J].Med J Peking Union Med Coll Hosp, 2012, 3(1): 21-25. doi: 10.3969/j.issn.1674-9081.2012.01.006.Ren
    [28] Aumayr K, Soleiman A, Sahora K, et al. HER2 gene amplification and protein expression in pancreatic ductal adenocarcinomas[J]. Appl Immunohistochem Mol Morphol, 2014, 22(2): 146-152.DOI:10.1097/PAI.0b013e31828dc392.
    [29] Ata A, Polat A, Serinsöz E, et al. Prognostlc value of increased HER2 expression in cancers of pancreas and biliary tree[J]. Pathol Oncol Res, 2015, 21(3): 831-838. DOI:10.1007/s12253-014-9847-x.
    [30] Liu HL, Gandour-Edwards R, Lara PN, et al. Detection of low level HER-2/neu gene amplification in prostate cancer by fluorescence in situ hybridization[J]. Cancer J, 2001, 7(5): 395-403.
    [31] Ross JS, Sheehan CE, Hayner-Buchan AM, et al. Prognostic significance of HER-2/neu gene amplification status by fluorescence in situ hybridization of prostate carcinoma[J]. Cancer, 1997, 79(11):2162-2170. DOI:10.1002/(SICI)1097-0142(19970601)79:11 < 2162:AID-CNCR14 > 3.0.CO; 2-U.
    [32] Signoretti S, Montironi R, Manola J, et al. Her-2-neu expression and progression toward androgen independence in human prostate cancer[J]. J Natl Cancer Inst, 2000, 92(23): 1918-1925. DOI:10.1093/jnci/92.23.1918.
    [33] Andersson J, Rosestedt M, Orlova A. Imaging of HER2 may improve the outcome of external irradiation therapy for prostate cancer patients[J]. Oncol Lett, 2015, 9(2): 950-954. DOI:10.3892/ol.2014.2760.
    [34] 邓在春, 俞文英, 胡国平, 等. erbB1/HER1和erbB2/HER2在肺癌的表达[J].现代实用医学, 2001, 13(11): 539-541. DOI:10.3969/j.issn.1671-0800.2001.11.003.Deng
    ZC, Yu WY, Hu GP, et al. Expression of erbB1/HER1 and erbB2/HER2 in hung cancer[J]. Modern Pract Med, 2001, 13(11):539-541. doi: 10.3969/j.issn.1671-0800.2001.11.003.Deng
    [35] Shen H, Du G, Liu Z, et al. Assessment and prognostic analysis of EGFR mutations or/and HER2 overexpression in Uygur′s Non-small Cell Lung Cancer[J]. Int J Clin Exp Med, 2015, 8(12):22300-22309.
    [36] Han Y, Xu JM, Duan HQ, et al. Correlation of epidermal growth factor receptor mutations and HER2/3 protein expression with clinical outcome in advanced non-small cell lung cancer patients treated with gefitinib[J]. Chin J Cancer, 2010, 29(1): 69-75.
    [37] Dijkers EC, Kosterink JG, Rademaker AP, et al. Development and characterization of clinical-grade 89Zr-trastuzumab for HER2/neu immunoPET imaging[J]. J Nucl Med, 2009, 50(6): 974-981. DOI:10.2967/jnumed.108.060392.
    [38] Oude Munnink TH, Korte MA, Nagengast WB, et al. 89Zr-trastuzumab PET visualises HER2 downregulation by the HSP90 inhibitor NVP-AUY922 in a human tumour xenograft[J]. Eur J Cancer, 2010, 46(3):678-684.DOI:10.1016/j.ejca.2009.12.009.
    [39] Lub-de Hooge MN, Kosterink JG, Perik PJ, et al. Preclinical characterisation of 111In-DTPA-trastuzumab[J]. Br J Pharmacol, 2004, 143(1): 99-106. DOI:10.1038/sj.bjp.0705915.
    [40] N Tinianow J, Pandya DN, Pailloux SL, et al. Evaluation of a 3-hydroxypyridin-2-one(2, 3-HOPO) Based Macrocyclic Chelator for 89Zr(4+) and Its Use for ImmunoPET Imaging of HER2 Positive Model of Ovarian Carcinoma in Mice[J]. Theranostics, 2016, 6(4): 511-521. DOI:10.7150/thno.14261.
    [41] Smith-Jones PM, Solit DB, Akhurst T, et al. Imaging the pharmacodynamics of HER2 degradation in response to Hsp90 inhibitors[J].Nat Biotechnol, 2004, 22(6): 701-706. DOI:10.1038/nbt968.
    [42] Smith-Jones PM, Solit D, Afroze F, et al. Early tumor response to Hsp90 therapy using HER2 PET:comparison with 18F-FDG PET[J]. J Nucl Med, 2006, 47(5): 793-796.
    [43] Dennis MS, Jin H, Dugger D, et al. Imaging tumors with an albumin-binding Fab, a novel tumor-targeting agent[J]. Cancer Res, 2007, 67(1): 54-261. DOI:10.1158/0008-5472.CAN-06-2531.
    [44] Orlova A, Tolmachev V, Pehrson R, et al. Synthetic affibody molecules:a novel class of affinity ligands for molecular imaging of HER2-expressing malignant tumors[J]. Cancer Res, 2007, 67(5):2178-2186. DOI:10.1158/0008-5472.CAN-06-2887.
    [45] Kramer-Marek G, Kiesewetter DO, Capala J. Changes in HER2 expression in breast cancer xenografts after therapy can be quantified using PET and 18F-labeled affibody molecules[J]. J Nucl Med, 2009, 50(7): 1131-1139. DOI:10.2967/jnumed.108.057695.
    [46] Ahlgren S, Wållberg H, Tran TA, et al. Targeting of HER2-expressing tumors with a site-specifically 99mTc-labeled recombinant affibody molecule, ZHER2:2395, with C-terminally engineered cysteine[J]. J Nucl Med, 2009, 50(5): 781-789. DOI:10.2967/jnumed.108.056929.
    [47] Orlova A, Wållberg H, Stone-Elander S, et al. On the selection of a tracer for PET imaging of HER2-expressing tumors:direct comparison of a 124I-labeled affibody molecule and trastuzumab in a murine xenograft model[J]. J Nucl Med, 2009, 50(3): 417-425. DOI:10. 2967/jnumed.108.057919.
    [48] Sörensen J, Sandberg D, Sandström M, et al. First-in-human molecular imaging of HER2 expression in breast cancer metastases using the 111In-ABY-025 affibody molecule[J]. J Nucl Med, 2014, 55(5):730-735. DOI:10.2967/jnumed.113.131243.
    [49] Sörensen J, Velikyan I, Sandberg D, et al.Measuring HER2-receptor Expression In Metastatic Breast Cancer Using[68Ga]ABY-025 Affibody PET/CT[J]. Theranostics, 2016, 6(2): 262-271.DOI:10.7150/thno.13502.
    [50] Westerlund K, Honarvar H, Norrström E, et al. Increasing the Net Negative Charge by Replacement of DOTA Chelator with DOTAGA Improves the Biodistribution of Radiolabeled Second-Generation Synthetic Affibody Molecules[J]. Mol Pharm, 2016, 13(5): 1668-1678.DOI:10.1021/acs.molpharmaceut.6b00089.
    [51] 蔡炯, 党永红, 郑堃, 等.含末端半胱氨酸人表皮生长因子受体2亲和体的68Ga标记和显像[J].中华核医学与分子影像杂志, 2013, 33(6): 460-463. DOI:10.3760/cma.j.issn.2095-2848.2013. 06.014.
    Cai J, Dang YH, Zheng K, et al. 68Ga-labeled HER2 affibody with C-terminal cysteine and its PET imaging[J]. Chin J Nucl Med Mol Imaging, 2013, 33(6): 460-463. doi: 10.3760/cma.j.issn.2095-2848.2013.06.014
    [52] Honarvar H, Westerlund K, Altai M, et al. Feasibility of Affibody Molecule-Based PNA-Mediated Radionuclide Pretargeting of Malignant Tumors[J]. Theranostics, 2016, 6(1): 93-103. DOI:10. 7150/thno.12766.
    [53] Strand J, Nordeman P, Honarvar H, et al. Site-Specific Radioiodination of HER2-Targeting Affibody Molecules using 4-Iodophenethyl-maleimide Decreases Renal Uptake of radioactivity[J]. Chemistry- Open, 2015, 4(2): 174-182. DOI:10.1002/open.201402097.
    [54] Miller J, Doss M, McQuillen R, et al. Impact of expression system on the function of the C6.5 diabody PET radiotracer[J]. Tumour Biol, 2012, 33(3): 617-627. DOI:10.1007/s13277-012-0361-z.
    [55] Robinson MK, Doss M, Shaller C, et al. Quantitative immuno-positron emission tomography imaging of HER2-positive tumor xenografts with an iodine-124 labeled anti-HER2 diabody[J]. Cancer Res, 2005, 65(4): 1471-1478. DOI:10.1158/0008-5472.CAN-04-2008.
    [56] Reddy S, Shaller CC, Doss M, et al. Evaluation of the anti-HER2 C6.5 diabody as a PET radiotracer to monitor HER2 status and predict response to trastuzumab treatment[J]. Clin Cancer Res, 2011, 17(6): 1509-1520. DOI:10.1158/1078-0432.CCR-10-1654.
    [57] Sedgwick SG, Smerdon SJ. The ankyrin repeat:a diversity of interactions on a common structural framework[J]. Trends Biochem Sci, 1999, 24(8): 311-316. doi: 10.1016/S0968-0004(99)01426-7
    [58] Zahnd C, Kawe M, Stumpp MT, et al. Efficient tumor targeting with high-affinity designed ankyrin repeat proteins:effects of affinity and molecular size[J]. Cancer Res, 2010, 70(4):1595-1605. DOI:10.1158/0008-5472.CAN-09-2724.
    [59] Goldstein R, Sosabowski J, Livanos M, et al. Development of the designed ankyrin repeat protein(DARPin) G3 for HER2 molecular imaging[J]. Eur J Nucl Med Mol Imaging, 2015, 42(2): 288-301.DOI:10.1007/s00259-014-2940-2.
    [60] Mironova KE, Chernykh ON, Ryabova AV, et al. Highly specific hybrid protein DARPin-mCherry for fluorescent visualization of cells overexpressing tumor marker HER2/neu[J]. Biochemistry(Mosc), 2014, 79(12): 1391-1396. DOI:10.1134/S0006297914120141.
    [61] Hamers-Casterman C, Atarhouch T, Muyldermans S, et al. Naturally occurring antibodies devoid of light chains[J]. Nature, 1993, 363(6428): 446-448. DOI:10.1038/363446a0.
    [62] Vaneycken I, Devoogdt N, Van Gassen N, et al. Preclinical screening of anti-HER2 nanobodies for molecular imaging of breast cancer[J]. FASEB J, 2011, 25(7): 2433-2446. DOI:10.1096/fj.10-180331.
    [63] D′Huyvetter M, Aerts A, Xavier C, et al. Development of 177Lu-nanobodies for radioimmunotherapy of HER2-positive breast cancer:evaluation of different bifunctional chelators[J]. Contrast Media Mol Imaging, 2012, 7(2): 254-264. DOI:10.1002/cmmi.491.
    [64] Xavier C, Blykers A, Vaneycken I, et al. 18F-nanobody for PET imaging of HER2 overexpressing tumors[J]. Nucl Med Biol, 2016, 43(4): 247-252. DOI:10.1016/j.nucmedbio.2016.01.002.
    [65] Vaidyanathan G, McDougald D, Choi J, et al. Preclinical evaluation of 18F-labeled anti-HER2 nanobody conjugates for imaging HER2 receptor expression by immuno-PET[J]. J Nucl Med, 2016, 57(6):967-973. DOI:10.2967/jnumed.115.171306.
    [66] Massa S, Vikani N, Betti C, et al. Sortase A-mediated site-specific labeling of camelid single-domain antibody-fragments:a versatile strategy for multiple molecular imaging modalities[J/OL]. Contrast Media Mol Imaging, 2016[2016-08-03]. 10.1002/cmmi.1696/pdf" target="_blank">http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1002/cmmi.1696/pdf. DOI:10.1002/cmmi.1696.
    [67] 朱媛, 段小艺, 王瑞峰, 等.乳腺癌HER2靶向分子探针的制备及体外MRI初步研究[J].中国医学影像学杂志, 2014, 22(5):336-339. DOI:10.3969/j.issn.1005-5185.2014.05.005.
    ZhuY, Duan XY, Wang RF, et al. Preparation of HER2-targeted molecular probe and its MR imaging in Vitro[J]. Chin J Med Imaging, 2014, 22(5): 336-339. doi: 10.3969/j.issn.1005-5185.2014.05.005.ZhuY,
    [68] Ding N, Sano K, Kanazaki K, et al. In Vivo HER2-Targeted Magnetic resonance tumor Imaging Using Iron Oxide Nanoparticles Conjugated with Anti-HER2 Fragment Antibody[J/OL]. Mol Imaging Biol, 2016[2016-08-03]. 10.1007/s11307-016-0977-2" target="_blank">http://link.springer.com/article/10. 1007/s11307-016-0977-2. DOI:10.1007/s11307-016-0977-2.
    [69] Yang H, Cai W, Xu L, et al. Nanobubble-Affibody:Novel ultrasound contrast agents for targeted molecular ultrasound imaging of tumor[J]. Biomaterials, 2015, 37: 279-288. DOI:10.1016/j.biomaterials.2014.10.013.
    [70] Dong X, Gu Y. Application of optical molecular imaging technology in the diagnosis and treatment of diseases[J]. J Chin Pharm Univ, 2014, 45(2): 145-152.DOI:10.11665/j.issn.1000-5048.20140203
    [71] Ag D, Bongartz R, Dogan LE, et al. Biofunctional quantum dots as fluorescence probe for cell-specific targeting[J]. Colloids Surf B Biointerfaces, 2014, 114: 96-103. DOI:10.1016/j.colsurfb.2013. 09.033.
    [72] Rakovich TY, Mahfoud OK, Mohamed BM, et al. Highly sensitive single domain antibody-quantum dot conjugates for detection of HER2 biomarker in lung and breast cancer cells[J]. ACS Nano, 2014, 8(6): 5682-5695. DOI:10.1021/nn500212h.
    [73] Tu CC, Chen KP, Yang TA, et al. Silicon quantum dot nanoparticles with antifouling coatings for immunostaining on live cancer cells[J]. ACS Appl Mater Interfaces, 2016, 8(22): 13714-13723. DOI:10.1021/acsami.6b02318.
    [74] Michalska M, Florczak A, Dams-Kozlowska H, et al. Peptide-functionalized ZCIS QDs as fluorescent nanoprobe for targeted HER2-positive breast cancer cells imaging[J]. Acta Biomater, 2016, 35:293-304. DOI:10.1016/j.actbio.2016.02.002.
    [75] Zhao N, Liu S, Jiang Q, et al. Small-protein-stabilized semiconductor nanoprobe for targeted imaging of cancer cells[J]. Chembiochem, 2016, 17(13): 1202-1206. DOI:10.1002/cbic.201600219.
  • [1] 张友黄钢魏伟军刘建军 . 纳米抗体分子影像探针的研究进展. 国际放射医学核医学杂志, 2022, 46(9): 555-560. doi: 10.3760/cma.j.cn121381-202110007-00207
    [2] 肖晴潘芯李崇佼蒋亚群王怡春文兵雷萍何勇 . 转铁蛋白受体靶向分子探针99Tcm-T7的放射性标记及肿瘤显像研究. 国际放射医学核医学杂志, 2022, 46(4): 223-229. doi: 10.3760/cma.j.cn121381-202110017-00167
    [3] 林潇唐明灯 . 靶向表皮生长因子受体分子探针研究进展. 国际放射医学核医学杂志, 2015, 39(1): 85-90. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2015.01.018
    [4] 张凯秀王雪梅赵建民 . 放射性核素显像探针在细胞凋亡中的研究进展. 国际放射医学核医学杂志, 2018, 42(6): 559-564, 576. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2018.06.015
    [5] 龚佳丽赵晋华 . 多模态纳米分子探针在动物模型易损斑块中靶向分子成像的研究进展. 国际放射医学核医学杂志, 2020, 44(10): 661-666. doi: 10.3760/cma.j.cn121381-201909035-00074
    [6] 袁洪卫林汉 . 毒蕈碱乙酰胆碱受体显像的分子探针. 国际放射医学核医学杂志, 1996, 20(3): 104-106.
    [7] 李丽赵长久田国梅 . CXC型趋化因子受体4及其分子显像剂在肿瘤方面的研究进展. 国际放射医学核医学杂志, 2014, 38(3): 190-196. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2014.03.012
    [8] 解朋黄建敏张芳潘莉萍99Tcm-MAG3-isoDGR-2C分子探针的制备与体内分布的实验研究. 国际放射医学核医学杂志, 2016, 40(5): 345-349. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2016.05.004
    [9] 韩彦江王猛智生芳徐万帮 . 人血清白蛋白结合型分子探针在核医学诊疗中的研究进展. 国际放射医学核医学杂志, 2023, 47(8): 496-502. doi: 10.3760/cma.j.cn121381-202204020-00330
    [10] 王培王帅亮朱华杨志 . 放射性核素探针在嵌合抗原受体T细胞治疗显像中的应用. 国际放射医学核医学杂志, 2023, 47(5): 302-307. doi: 10.3760/cma.j.cn121381-202206010-00290
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出版历程
  • 收稿日期:  2016-08-04
  • 刊出日期:  2016-09-25

HER2的表达及其分子影像的研究进展

    通讯作者: 张永学, zhyx1229@163.com
  • 430022 武汉,华中科技大学同济医学院附属协和医院核医学分子影像研究所,湖北省分子影像重点实验室,教育部分子靶向治疗重点实验室
基金项目:  国家自然科学基金重点项目 31630049

摘要: 人表皮生长因子受体2(HER2)是一种具有酪氨酸激酶活性的跨膜受体,同时也是一种高表达于各种癌细胞的生物标志物。高表达HER2的肿瘤往往预后不良。HER2分子影像主要是利用放射性核素、磁性材料、发光物质等标记配体能与HER2特异性结合的特性,对患者体内HER2高表达病灶进行显像,从而协助HER2阳性疾病的诊断,筛选出抗HER2治疗有效的患者,并可用于疗效评估,是近年来肿瘤精准医疗研究的热点之一。

English Abstract

  • 近年来,随着研究者对癌症发生发展的分子机制的认知不断深入,在此基础上建立起来的生物靶向治疗也得到了进一步发展。人表皮生长因子受体2(human epidermal growth factor receptor 2,HER2)是一种高表达于各种癌细胞的生物标志物,在癌症的发生、发展过程中起着重要作用。同时HER2也是生物靶向治疗的目标受体,现有几种抗HER2的靶向药物如单克隆抗体曲妥珠单抗(商品名:赫赛汀)和小分子抑制剂埃罗替尼(erlotinib)对高表达HER2的恶性肿瘤患者具有良好的疗效。但由于恶性肿瘤的异质性,靶向治疗的临床应用很大程度上受限于肿瘤生物标志物的有效检测,虽然肿瘤切除术后的免疫组化分析可以获得肿瘤原发灶的生物学类型及HER2表达情况,但对于不能切除的组织以及远处转移灶则无法获得其表达信息,给生物靶向治疗带来困难。近年来建立的HER2表达分子影像技术是一项无创性检查,能精准、安全、无创地获得全身HER2阳性表达的转移病灶,从而为某些恶性肿瘤治疗方案的制订提供重要依据。

    • HER2是HER家族(HER1-4)四大成员之一,它们共同参与细胞生存、生长和分化的调节。1984年,Schechter等[1]发现了HER2基因,即c-erbB-2基因定位于17号染色体长臂(17q12),编码相对分子质量为185 000的跨膜受体样蛋白,具有酪氨酸激酶活性。HER2受体的结构主要由3部分组成,即胞内区、胞外区和跨膜区,其中胞外区可与特异的配体分子结合致使酪氨酸残基磷酸化,进而激活下游信号通路影响细胞的增殖与分化,因此为肿瘤靶向治疗提供了可能性。虽然HER2没有任何已知的配体,但常与家族其他成员组成异源二聚体,在许多肿瘤发生发展中起着类似癌基因的作用,其在乳腺癌中的研究最为深入。HER2过度表达的结果包括促进细胞生长和增殖--肿瘤发生,具有抑制细胞凋亡、诱导血管和淋巴管新生、提高细胞运动能力、增强肿瘤的浸润转移作用。

      HER2蛋白在多种正常组织如乳腺、胃肠道、呼吸道和泌尿生殖道上皮中呈低表达,而其基因扩增和过表达存在于多种肿瘤组织中,包括乳腺癌、胃/食管癌、胰腺癌、前列腺癌、结肠癌、肺癌、卵巢癌和宫颈癌等。

    • 美国癌症协会最新数据显示,乳腺癌发病率在女性恶性肿瘤中位居榜首[2]。近几年我国女性乳腺癌的发病率及病死率也呈逐年上升的趋势,在女性癌症死因中排名第6[3]。1985年有报道称在人类乳腺癌细胞系MAC117中发现了HER2基因扩增[4]。1987年,Slamon等[5]对189例乳腺癌患者的研究发现,HER2在20%~25%乳腺癌患者中过度表达,且HER2基因扩增是乳腺癌的独立危险因素,从而可预测患者的生存时间和复发时间。该研究表明,HER2阳性患者的生存期比阴性者缩短一半以上,转移灶HER2阳性的乳腺癌患者的中位生存期为8~10个月,而HER2阴性者为17~22个月。一项包含107项(共涉及39 730例患者)有关乳腺癌患者HER2表达水平的荟萃分析也表明,1987年至2009年大部分研究(95项研究,88%)单变量或多变量分析均证实了不管是HER2基因扩增亦或HER2蛋白表达水平升高都可预示乳腺癌的发生,且HER2水平与高侵袭性肿瘤关系密切[6]。还有研究发现,HER2过度表达也见于乳腺内或乳腺外的Paget′s病患者[7]。经免疫组化分析,乳腺癌可根据雌激素受体(estrogen receptor,ER)、孕酮受体(progesterone receptor,PR)、HER2和增殖相关抗原Ki67的表达情况分为多种不同亚型,各种亚型对不同化疗药物的敏感性不同,目前,乳腺癌化疗的选择很大程度上是基于癌细胞对化疗药物敏感性的预测,有研究提示,与激素受体阴性(ER/PR-)伴HER2过表达或三阴(ER/PR-、HER2-)乳腺癌患者相比较,ER/PR+、HER2-患者化疗效果较差,但对激素治疗反应敏感;此外,新辅助化疗中加入抗HER2药物(如曲妥珠单抗)对HER2+乳腺癌的治疗有效[8]。总之,HER2表达有别于肿瘤大小、淋巴结转移及激素受体,是影响乳腺癌发生、进展、恶化的重要因素,也是肿瘤复发和生存期长短的独立预后因子。HER2高表达虽提示肿瘤恶性程度高、进展迅速、化疗缓解期短、预后不佳,但同时也是临床应用曲妥珠单抗靶向治疗的前提和关键。

    • 卵巢癌是妇科常见恶性肿瘤之一,病死率居妇产科恶性肿瘤的首位。据统计全球范围内每年新增卵巢癌患者204 000例(占全部癌症病例的4%),病死人数为125 000例(占全部癌症死亡人数的4.2%)[9];尽管在过去几十年卵巢癌患者的平均生存时间稍有延长,但其5年生存率仍保持在50%以下[10]。卵巢癌中也存在HER2基因扩增和蛋白质过表达,表明HER2在卵巢癌的发生、发展及恶化中起着重要作用。目前众多学者对卵巢癌HER2的过表达尚有争议。多数认为HER2蛋白在约15%~30%的卵巢癌中过表达[11],在难治性、易复发的卵巢透明细胞腺癌(CCA)中,其过表达率甚至超过40%[12],但也有一些报道认为HER2在卵巢癌中的过表达率仅为10%左右[13]。Bookman等[14]对837例卵巢癌患者的研究发现,仅有11.4%为HER2阳性(以2+、3+记为阳性);另一项320例卵巢癌样本的多中心研究发现,仅4.7%的卵巢癌HER2阳性计分为3+,而用荧光原位杂交(FISH)技术测得6.6%的癌组织中存在HER2基因扩增[15]。卵巢癌中HER2表达水平不一可能与取材部位、时间、方式、检测方法以及评分系统不同有关。

      有研究表明,HER2表达水平高低与卵巢癌细胞分化程度有关,低分化卵巢癌组织中HER2蛋白表达水平较高,而高分化卵巢癌组织则与之相反[16]。有学者用免疫组化分析方法检测良性卵巢浆液性腺瘤、交界性腺瘤以及不同恶性程度浆液性腺癌HER2的表达水平,也发现恶性程度越高的肿瘤组织HER2表达水平越高[17]。有学者猜想kinesin family member 2A(KIF2A,驱动蛋白13家族中的一员,参与细胞的迁移和信号发送)和HER2异常表达与卵巢上皮癌的侵袭行为有关,这两种蛋白均可通过激活PI3K/AKT(磷酸肌醇3激酶和蛋白激酶B)信号传递途径,在细胞增殖、存活和侵袭等过程中发挥重要作用;为确定KIF2A和HER2对于卵巢上皮癌的预后价值,Wang等[18]用免疫组化对111例患者卵巢上皮癌组织和48例正常卵巢或输卵管组织的KIF2A和HER2蛋白表达水平进行了检测,发现卵巢上皮癌组织细胞的KIF2A和HER2蛋白表达水平远高于正常卵巢或输卵管组织;生存分析表明,过表达KIF2A和HER2的卵巢癌患者总生存率明显低于KIF2A-和(或)HER2-患者,该研究还提示KIF2A和HER2蛋白表达情况与卵巢癌FIGO(国际妇产科协会)分期有关,无论是单变量还是多变量分析均证实了KIF2A和HER2表达可作为卵巢上皮癌患者生存期的独立预测因素。

    • 胃癌是消化道最常见的恶性肿瘤之一,我国2010年癌症登记中心的年度报告显示,胃癌在我国恶性肿瘤中排名第3,其病死率居世界首位[19]。目前胃癌对放化疗敏感度不高,再加上肿瘤浸润和远处转移严重影响患者的预后,因此急需探索可用于临床诊断和预后评估的生物标志物,以此作为胃癌诊断和治疗的靶点。HER2作为细胞信号传导通路中的一个重要起动因子,在癌细胞增殖、分化、转移过程中起重要作用,因此HER2阳性的胃癌进展快、侵袭性强、容易恶化、预后不佳。国内外诸多研究报道了胃癌HER2阳性表达率存在巨大偏差,介于8.2%~53.4%,一组11 000例胃癌样本的系统评价结果显示,HER2阳性表达率为18%,且阳性患者总生存期相对较短[20]。全球多中心临床研究ToGA试验(曲妥珠单抗联合化疗与单纯化疗治疗HER2阳性晚期胃或胃食管结合部位癌的Ⅲ期、开放、随机对照临床试验)报道HER2阳性表达率为22.1%[21]。胃癌HER2阳性表达与多种因素密切相关,但各文献报道的相关性并不完全一致。一项包含5290例胃癌病例的荟萃分析表明,HER2过表达与胃癌分型(包括Bormann分型和Lauren分型)、肿瘤细胞分化程度、淋巴结和静脉浸润等因素相关,而与肿瘤大小、浸润深度和TNM分期无关[22]。还有研究发现,HER2表达情况和年龄有关,在小于45岁的胃癌患者中HER2蛋白过表达率仅为3%,HER2基因扩增率为5%,阳性表达率明显低于老年患者[23]。胃癌原发灶不同区域的HER2表达水平存在明显差异,多区域同时取材将有助于全面而准确地评估HER2表达情况。

      与HER2阳性乳腺癌不同,HER2过表达或基因扩增可否作为胃癌独立预后因素尚存争议。有研究表明,HER2阳性胃癌患者的预后较HER2阴性患者差[24],也有研究提示其二者预后无差异[25]。我国一项大规模多中心回顾性研究纳入了1562例胃癌患者,探索HER2表达水平与经R0切除术(胃切缘显微镜下未见癌细胞)后胃癌患者预后之间的关系,结果表明,548例患者(35.08%)为HER2阳性,其阳性结果与无病生存率或总生存率无关,提示HER2阳性水平不能作为胃癌患者生存预测的有效指标[26]

    • 胰腺癌是居于世界前4位的高发恶性肿瘤,在过去的30年中生存率无任何提高。国内外已有大量资料证实胰腺癌中亦存在HER2蛋白过表达和基因异常,但其阳性率不高。为探讨胰腺癌组织中HER2基因表达状态及其在治疗与预后评估中的作用,任新瑜等[27]对手术切除的81例胰腺导管癌及癌旁胰腺组织标本进行了HER2蛋白表达及基因状态变化的检测,结果显示,9例患者癌组织(11.1%)HER2蛋白表达阳性,15例(18.5%)HER2基因扩增,HER2基因扩增与淋巴结转移有显著相关性,而癌旁胰腺组织未检测到HER2蛋白表达及基因扩增。一组87例胰腺导管腺癌样本研究表明,HER2过表达只存在于小部分胰腺导管腺癌样本中,且免疫染色具有明显异质性,经免疫组织染色发现仅9例HER2阳性表达为2+和3+,其中仅6例用双色银原位杂交检测到HER2基因扩增,但未发现HER2表达与临床病理特征及生存率预测之间的关系[28]。HER2的表达与胰腺癌的侵袭性相关,在胰腺癌侵袭转移过程可能起重要作用。然而,HER2表达与胰腺导管腺癌存活率的预测价值尚未明确,已有研究提示HER2过表达不能作为胰腺癌的预后判断指标[29]

    • 前列腺癌是一种严重影响老年男性健康和生命的疾病,近年来其在我国的发病率明显上升。不少研究者采用荧光原位杂交(FISH)技术对前列腺癌中HER2基因扩增进行检测,其结果不一,在前列腺癌原发灶中HER2基因扩增率为0~53%[30],用免疫组化分析HER2蛋白在前列腺癌中的阳性表达率为0%~100%[31]。Signoretti等[32]检测119例前列腺癌标本,其中67例仅行手术切除前列腺(UNT组),34例在行前列腺癌根治术前进行了抗雄激素治疗(TAA组),18例为雄激素非依赖型前列腺癌(AI组),结果显示,HER2蛋白在前列腺癌中存在过度表达(总阳性率为42.8%),尤其是经抗雄激素治疗者(20/34)及雄激素非依赖性的患者(14/18),提示HER2蛋白过表达可能对前列腺癌的发生及由激素依赖性发展为激素非依赖性的过程具有重要作用,进而可用于识别易于恶化进展及复发的前列腺癌患者。近年来有学者分析HER2可能参与前列腺癌细胞对放疗的抵抗作用,癌细胞膜上过表达的HER2蛋白对体外放疗的反应可导致癌细胞产生抗放射性[33]

    • 肺癌是我国十大恶性肿瘤之一,其5年生存率很低。目前认为HER2基因是肺癌重要的癌基因之一,与肿瘤浸润和转移有关。有学者用免疫组化法检测了70例肺癌(43例鳞癌和27例腺癌)组织中HER2的表达,发现其在41.4%的患者中有过表达,并与肺癌淋巴结转移、TNM分期、患者术后生存率相关[34],提示HER2是晚期肺癌生长的调控基因,干预HER2的过表达可能是治疗晚期肺癌的有效方法。对111例非小细胞肺癌样本(经穿刺活检或术中切除获得)的回顾性研究发现,表皮生长因子受体(epidermal growth factor receptor,EGFR)基因突变率为10.81%,HER2阳性表达率为21.62%[35],提示EGFR基因突变可阻断非小细胞肺癌病情进展,延长患者存活时间,而HER2过表达则预示着不良预后。有学者针对EGFR基因突变及HER2/HER3蛋白表达水平与吉非替尼治疗晚期非小细胞肺癌(NSCLC)疗效之间的关系进行了探索,结果表明,HER2高表达患者对吉非替尼治疗的有效率明显高于低表达患者,但未发现HER2/HER3的表达水平与疾病进展时间及总生存时间的相关性,但HER2/HER3高表达患者经吉非替尼治疗后的生存期较低表达患者略长(9.1个月vs. 6.1个月),且HER2和HER3同时高表达的患者这种现象更显著;EGFR基因突变伴随HER2高表达的患者对吉非替尼的反应较单一的HER2阳性患者更敏感;因此联合检测EGFR基因突变和HER2/HER3蛋白表达水平可更好预测吉非替尼对晚期非小细胞肺癌的疗效[36]

    • 近几年针对HER2配体的分子影像研究已取得进展,除免疫球蛋白曲妥珠单抗(trastuzumab)和帕妥珠单抗(pertuzumab)外,还包括免疫球蛋白片段F(ab′)2、双链抗体(diabodies)、纳米抗体(nanobodies)、亲合体(affibody)以及人工设计的锚蛋白重复蛋白(ankyrin-repeat proteins)。在此基础上构建出用于SPECT、PET、MRI、超声及光学显像的靶向分子探针是当前HER2分子影像的研究热点。理想的HER2分子影像探针应具有快速的组织穿透能力,亲和力强,靶受体与分子探针具有较好的特异性识别能力,未结合的分子探针应能快速从血液循环中清除,靶与非靶比值高等优点。下面就几种不同的HER2表达分子探针及其进展做一介绍。

    • IgG分子对于靶抗原具有高亲和力,但它较长的生物半衰期限制了其在分子影像中的应用,因为在成像之前需要足够的血液清除率以达到最佳的肿瘤-血液分布比率;此外,IgG较大的相对分子质量(150 000)也阻碍了它在肿瘤组织中的渗透过程。放射性标记的曲妥珠单抗和帕妥珠单抗已被用于临床和临床前研究,如89Zr-trastuzumab、111In-DTPA-trastuzumab等。Dijkers等[37]89Zr标记曲妥珠单抗构建分子探针89Zr-trastuzumab,并用于HER2的PET显像,结果发现,89Zr-trastuzumab可与HER2高表达细胞强效结合,低表达HER2的细胞则与之相反。此外,微型PET显像监测到经NVP-AUY922[一种热休克蛋白90(heart shock protein90,Hsp90)抑制剂]处理后89Zr-trastuzumab的摄取量下降了41%,即HER2分子水平出现了相应下调[38],提示该方法有助于HER2阳性疾病治疗后的疗效评价及预后判断。

      有研究者用111In标记曲妥珠单抗靶向探针进行小鼠移植瘤模型SPECT显像发现,高表达HER2的SKOV3细胞(人类卵巢癌细胞系)对标记探针的摄取明显高于低表达HER2的GLC4细胞(人类小细胞肺癌细胞系),且HER2阳性转移灶的放射性摄取比原发灶高[39]。除DTPA外各种新型螯合剂也处于探索中,如2,3-HOPO(2,3-羟基吡啶酮,一种新型八齿双环螯合剂),用于89Zr与trastuzumab的标记效果较好[40]

    • 抗体片段F(ab′)2作为配体的优点是分子质量小,其更短的半衰期有利于快速成像,且行两次显像的时间间隔更短。Smith-Jones等[41]研究发现,经Hsp90抑制剂处理24 h后HER2阳性病灶对68Ga-DOTA-F(ab′)2-trastuzumab的摄取减少,即肿瘤细胞HER2表达水平有所下降。此外,用Hsp90抑制剂对HER2高表达移植瘤处理后,68Ga-DOTA-F(ab′)2-trastuzumab PET显像对HER2减量调节检测的灵敏度明显高于18F-FDG PET[42]

      为了提高Fab片段在组织中的分散程度及肿瘤细胞的摄取率,Dennis等[43]对一种双功能分子AB.Fab4D5(能够同时与HER2和白蛋白相结合)进行SPECT/CT显像发现,静脉注射111In-AB.Fab4D5后48 h内在HER2高表达移植瘤中的摄取率高于111In-Fab4D5和111In-trastuzumab;此外,AB.Fab4D5由于白蛋白的关系使其经肾脏分泌减少,以至于在体内存留的时间延长,有利于其在组织内充分分布、扩散以提高肿瘤的摄取率。

    • 亲合体分子是一类由58个氨基酸残基组成、分子质量仅为7000的非免疫球蛋白亲和配体,其功能类似于抗体却又有着一些抗体所不具备的性质,如相对分子质量小、折叠速率快、选择性和亲和力高,以及结构稳定、可耐受化学修饰等。

      亲合体分子Z(HER2:342)能够特异性结合HER2,且不受放射性核素标记和曲妥珠单抗的影响[44]18F-FBEM-Z(HER2:342)可用于检测HER2表达水平及其在Hsp90抑制剂处理后HER2下调的改变FBEM,且在HER2阳性瘤灶内能快速积累,并于20 min后达较高的肿瘤/血液和肿瘤/肌肉分布比值。因此,18F标记的亲合体分子将有望用于治疗期间HER2表达变化的监测[45]。Ahlgren等[46]发现,99Tcm-Z(HER2:342)-C经注射后能够在HER2高表达组织中快速聚集,且肝脏的摄取量明显低于肿瘤组织,靶与非靶比值高。Orlova等[47]发现,124I-PIB-Z(HER2:342)也表现出相似的特性,亲合体分子能在血流中被快速清除,其肿瘤/非肿瘤组织(血液、肝、肺)比值高PIB

      Sörensen等[48]首次在人体利用基于亲合体分子111In-ABY-025的HER2分子影像,监测乳腺癌转移灶HER2表达水平,结果显示,注射111In-ABY-025后,血液清除速率快,4~24 h时可获得高对比度的HER2分子影像,且与HER2的结合不受HER2靶向药物治疗的影响,患者受到的辐射有效剂量为0.15 mSv/MBq,安全可耐受;在HER2阳性的转移灶内,肿瘤/血液放射性比值高,而HER2阴性转移瘤正好相反;因此,111In-ABY-025可安全用于人体显像,无创性定位HER2阳性转移灶。在后续研究中还发现,68Ga-ABY-025 PET/CT可精确定量转移性乳腺癌患者全身的HER2表达水平[49]

      早期有学者发现,在亲合体分子的N端连接一个带负电荷的纯化标签可减少其在肝脏的摄取,因此,Westerlund等[50]设想在亲合体分子的N端连接一个螯合剂也能达到相同效果,为验证此设想,他们将DOTA和DOTAGA(DOTA的衍生物,GA为谷氨酸)两种螯合剂通过酰胺键人工结合到Z(HER2:2891)的N端,并用111In和68Ga进行标记,结果发现,111In-DOTAGA-Z(HER2:2891)和68Ga-DOTAGA-Z(HER2:2891)在肝脏和血液中均摄取较少,放射性也较弱,且前者的血液清除速率较后者更快;另外,与DOTA相比,DOTAGA复合物的肿瘤/血液和肿瘤/肝脏比值更高。蔡炯等[51]通过基因工程制备含末端半胱氨酸的HER2亲合体,以DOTA为螯合剂用68Ga标记,用于HER2表达的乳腺癌细胞体外结合实验和体内microPET显像,并显示出良好的生物学性能。

      Honarvar等[52]为减少亲合体分子在肾内的重吸收,设计出亲合体-PNA(肽核酸)嵌合体Z(HER2:342)-SR-HP1[由一种重组表达的亲合体分子Z(HER2:342)-SR-H6和杂交探针1(hybridization probes,HP1)共价结合构成]及与之互补的HP2杂交探针(可用125I和111In标记),并用于HER2阳性的卵巢癌细胞系SKOV-3移植瘤寻靶实验,结果发现,提前注射ZHER2:342-SR-HP1 4 h后PNA互补探针111In/125I-HP2高度浓聚于移植瘤灶内[1 h时的摄取率达(19±2)%ID/g],且在血液和肾脏内的吸收明显减少,因此,应用基于亲合体-PNA介导的预定位技术能特异性地将放射性核素输送至肿瘤组织,提高了肿瘤组织的放射性浓度,减少了血液和肾内的放射性本底。Strand等[53]发现IPEM(4-iodophenethylmaleimide,4-碘化苯乙基马来酰亚胺)凭借其较强的亲脂性和对放射性的代谢能力,也能减少肾内的放射性聚集,从而改善肿瘤成像的对比度。

    • 双链抗体是由单链抗体(scFv)通过非共价键构成的二聚体。C6.5双链抗体(C6.5db)可特异性结合靶受体HER2,其相对分子质量小(52 000)、半衰期短,因而首次通过肾脏时即被清除。它可产自于毕赤酵母Pichia pastoris(P-C6.5db)或是大肠杆菌Escherichia coli(E-C6.5db)[54],用于HER2分子影像探针的有124I-E-C6.5db、125I-E-C6.5db。

      有研究发现,124I-E-C6.5db在注射后4 h就能识别HER2阳性的SKOV3细胞,且在24 h和48 h时肿瘤/血液分布比高达6.7和13.5,而在HER2阴性的MDA-MB-468肿瘤组织中的分布与血液无明显差异,表明该显像剂可用于评价HER2的水平,并作为针对HER2治疗反应的预测剂[55]。另一项研究发现,在体外帕妥珠单抗和C6.5db竞争性结合HER2,而曲妥珠单抗和C6.5db与HER2几乎同时结合,肿瘤摄取125I-E-C6.5db的量随着曲妥珠单抗和帕妥珠单抗的存在而减少,因此它在靶向治疗期间进行HER2水平监测的临床应用方面将会受到限制[56]

    • DARPins由演变保守的天然锚蛋白重复蛋白构成,它也存在于人类基因组表达的众多结合蛋白中。有研究发现,DARPins贯穿于细胞内,结合在细胞膜上,还可以被分泌,它们通过结合各种不同的靶蛋白参与调节蛋白质之间的相互作用,从而实现多种生理功能;每一次锚蛋白重复都贡献出了一个靶向结合位点,以致能与靶分子高度亲和;此外,锚蛋白重复形成的支架结构具有高度通用性,可通过对其重复结构进行复制、剪切或重排来选择性改变其特异性结合的对象[57]

      Zahnd等[58]发现,注射99Tcm-G3 DARPins(G3:Gly3, glycine)后1 h和24 h瘤灶内的分布分别为(9.12±1.77)%ID/g和(6.46±0.96)%ID/g,由于血流对G3 DARPins快速清除导致在1 h后肿瘤/血液比值高达12.67±3.34,且在48 h后升至71.78±26.62;G3 DARPins在整个肿瘤组织中的渗透速度相当快,同时肿瘤边缘仅有轻微浓聚,使得显像更加清晰。然而肿瘤/肝脏摄取比值在48 h后仍小于2,因此G3 DARPins不利于分辨肝脏内HER2阳性转移瘤。

      G3 DARPins可与六聚组氨酸(hexahistidine,His6)或谷氨酰组氨酸[histidine glutamate,(HE)3]结合形成His6-G3和(HE)3-G3。有研究发现,无论是用125I还是111In标记,(HE)3-G3在肝脏的摄取率明显低于His6-G3;注射显像剂4 h后125I-(HE)3-G3和111In-(HE)3-G3均可在HER2阳性病灶处显像,但相较125I-(HE)3-G3(24 h肿瘤/血液摄取比值为22.0±11.3)而言,111In-(HE)3-G3在肿瘤组织中扩散更充分且从血清中清除更迅速,24 h肿瘤/血液比值高达343.7±161.3,因此更有利于形成清晰图像[59]

      Mironova等[60]用红色荧光蛋白mCherry标记DARPins9-29构建出HER2高特异性的杂交探针DARPins-mCherry,并通过免疫荧光分析证实了其可用于HER2过表达细胞的荧光可视化,从而使HER2阳性病灶清晰显像。

    • 1993年,比利时科学家Hamers-casterman等[61]首次在Natrue报道,骆驼血液中的抗体有一半没有轻链,且这些缺失轻链的重链抗体(heavy-chain antibodies,HCAbs)能像正常抗体一样与抗原等靶标紧密结合,另外不像单链抗体(scFv)那样互相黏连甚至聚集成块。这种抗体只包含一个重链可变区(variable domain of heavy chain of HCAb,VHH)和两个常规的CH2和CH3区,更重要的是单克隆出的VHH区具有很好的结构稳定性和抗原结合活性,是目前已知的可结合靶抗原的最小单位。

      抗HER2的纳米抗体2Rs15d可特异性结合HER2,且不受曲妥珠单抗治疗的影响。有研究发现,99Tcm-2Rs15d因其血流清除速率快而很少在血液、肝脏等非肿瘤组织中被摄取[经注射1.5 h后血液和肝脏放射性浓聚分别为(0.26±0.03)%ID/g和(0.72±0.14)%ID/g],而在HER2阳性肿瘤组织中高度浓聚[(4.19±0.47)%ID/g],有利于对比成像[62]。另外,有研究发现,基于双功能螯合剂(1B4M-DTPA)用177Lu标记2Rs15d形成的复合物177Lu-DTPA-2Rs15d,静脉注射后24 h肿瘤/血液比高达1264.08±53.108,这种高对比度有利于HER2阳性肿瘤组织清晰显影,而HER2阴性移植瘤的摄取基本可以忽略;同时它的特异性寻靶能力有助于药物聚集于HER2阳性肿瘤进行放射免疫治疗[63]

      Xavier等[64]18F-纳米抗体PET显影用于HER2阳性肿瘤的诊断与探查进行了研究,研究表明,18F-纳米抗体高度浓聚于HER2阳性移植瘤,而在非肿瘤组织中分布率较低,靶与非靶比值高,且18F-纳米抗体识别HER2蛋白不受治疗过程中曲妥珠单抗的影响,因此可用于正在进行曲妥珠单抗靶向治疗的患者全身HER2分子水平变化的监测。Vaidyanathan等[65]也发现,18F-RL-I-5F7纳米抗体分子探针有良好的肿瘤/血液比值,在评估HER2分子水平方面具有极佳优势。然而,较多的显像剂聚集于肾脏是影响本底的重要问题,如何减少肾脏的摄取还有待进一步研究。

      Massa等[66]发现转肽酶A介导的纳米抗体多功能定点标记可用于多模态分子显像,即经转肽酶A介导,纳米抗体分子可分别结合3种不同的探针,即用于SPECT显像的111In-DTPA/NOTA(NOTA:1, 4, 7-triazacyclononane-1, 4, 7-triacetic acid, 1, 4, 7-三氮杂环十二烷-1, 4, 7-三羧酸);用于PET显像的68Ga-DTPA/NOTA和用于荧光反射显像(FRI)的荧光染料Cy5。这种酶结合并不影响纳米抗体对HER2的亲和性,也不影响其放射标记的有效性和光谱特性。该实验结果表明,3种显像模式中的示踪剂均能够在HER2过表达的BT474M1-肿瘤灶内高度浓聚,且具有良好的靶与非靶比值和快速成像等优势。

    • MR分子成像技术是以靶向性配体为载体,通过其与靶分子特异性结合,将探针导向靶标,利用高场强的MR成像技术探测体内靶分子的分布情况,实现靶分子的定位显像。使用MR分子成像技术对肿瘤组织进行标记、显像是目前分子影像的研究热点之一。设计适宜的分子探针可增加MR成像的灵敏度。MR靶向分子探针主要由靶向性配体、转运体及其携带的对比剂组成,目前常用的MR对比剂有以钆(gadolinium,Gd)为代表的顺磁性分子探针,能产生T1阳性信号对比,代表性产物有Gd-DTPA和Gd-DOTA;以及以氧化铁为代表的超顺磁性分子探针,如氧化铁纳米粒(iron oxide nanoparticles,IONPs)。

      有研究者将HER2特异性荧光标记分子FITC-LTVSPWY(七肽分子,由苏州特瑞药业有限公司负责合成)与Gd-DTPA耦联获得MR靶向分子探针FITC-LTVSPWY-Gd-DTPA,以HER2阳性的人乳腺癌细胞SKBR3、MCF-7及HER2阴性细胞MDA-MB-231为观察对象,结果发现,FITC-LTVSPWY-Gd-DTPA组T1加权成像呈高信号,Gd-DTPA组及空白对照组均呈等信号,且存在视觉差异;FITC-LTVSPWY-Gd-DTPA具有良好的磁特性,且HER2靶向性强,可为HER2阳性癌症患者个体化治疗提供影像学依据[67]。也可以将IONPs耦联单链抗体构建靶向HER2的MR分子探针scFv-IONPs作为HER2阳性肿瘤MR分子显像的特异性对比剂[68]

    • 随着超声分子探针技术的兴起,超声分子影像已成为当前医学影像学研究的热点之一。其原理是将特异性配体结合到直径小于红细胞的超声造影剂表面,经血循环运输并穿透血管壁聚集于靶组织,从分子或细胞水平获得病变组织的生化及病理改变。分子探针--微泡造影剂的设计是超声分子影像研究的重点。目前用于超声分子影像的第四代纳米级超声微泡造影剂有磷脂微泡造影剂、纳米级微泡造影剂和液态氟碳纳米粒,其特点是能够穿过血管内皮细胞进入组织间隙,实现血管外聚集成像,对血管外组织病变进行靶向诊断和靶向载药治疗;且能在体内稳定存在较长时间,便于延迟显像或重复检查。也有采用单乳化法制备包裹了液态氟碳(PFH)的高分子PLGA[poly(lactic-co-glycolic acid),聚乳酸-羟基乙酸共聚物]纳米球(PFH-PLGA),通过碳二亚胺法将曲妥珠单抗(trastuzumab)连接到纳米球表面,制成HER2靶向纳米球(PFH-PLGA-trastuzumab),用于HER2阳性乳腺癌显像。

      Yang等[69]通过运用薄膜水合法控制磷脂膜的厚度研制出统一大小的纳米微泡(nanobubbles,NBs),并将其与亲合体分子结合获得纳米级超声造影剂NBs-affibody,实验结果发现,NBs-affibody对HER2阳性肿瘤具有高度亲和性,且呈现出明显的超声强化[峰值强度达(104.5±2.1)dB]。该研究表明,NBs-affibody作为一种新型HER2靶向超声造影剂,能够进行安全而有效的分子显像,有望用于早期癌症生物标志物(HER2)的定量诊断及靶向治疗。

    • 光学分子成像技术是一种通过荧光标记的分子探针与靶标结合发出信号,经光学影像设备检测和计算机处理最终获得病变组织的分子信息,实现肿瘤早期非侵入性检测、诊断,指导个体化治疗。设计具有靶向性强、亲和力高的分子探针是光学分子成像的基础。光学分子探针是由荧光团、识别基团和连接臂组成,目前主要分为有机荧光探针和无机纳米材料探针[70]。传统的有机染料存在光谱较窄、光稳定性较差、荧光寿命较短等缺点,而新型无机纳米材料的荧光强度、光稳定性与之相比明显增强。

      量子点(quantum dots,QDs)是一种半导体纳米粒,近年引起国内外学者的关注,其检测肿瘤的灵敏度较传统荧光蛋白明显提高。Ag等[71]将抗HER2抗体共价连接在修饰的巯基乙酸量子点(TGA-QDs)上构建分子探针,以过表达HER2的A549肺癌细胞作为寻靶实验对象,以低表达HER2的NIH-3T3细胞作为对照,荧光显微成像结果显示,TGA-QDs/anti-HER2检测到的荧光信号明显较对照组强;进一步研究发现,TGA-QDs/anti-HER2可在特异性识别受体后被细胞摄取,进入胞质的囊泡结构,通过荧光显像实现对活细胞的标记和定位。Rakovich等[72]将基于QDs的纳米探针结合抗HER2抗体单域(sdAbs)所构成的复合物sdAbs-QDs用于乳腺癌和肺癌细胞的免疫标记,将其成像表现与HER2单克隆抗体结合传统有机染料Alexa Fluor 488(一种常用的非常明亮的绿色荧光探针)或Alexa Fluor 568所构成的探针进行比较,结果发现,sdAbs-QD染色更鲜明,使得肺癌病灶轮廓更清晰,且能区分HER2差异性表达;sdAbs-QD有助于确认和定位癌症早期的生物标志物,为早期癌症的检测提供灵敏方法。

      另有研究者发现硅量子点(silicon quantum dots,SiQDs)具有无毒、抗光漂白以及能够被生物分解的特性,用牛血清白蛋白(BSA)和高分子聚乙二醇(PEG)组成的防污涂料,对SiQD-NPs(NPs:nanoparticles,纳米粒)结合anti-HER2形成的复合物进行包裹,所构成的分子探针可用于肝癌细胞的免疫染色,研究结果表明,SiQD-NPs/anti-HER2可高特异性识别HER2阳性的SKOV3细胞并使其被荧光染色,而与HER2阴性的CHO细胞的结合可忽略不计[73]。Michalska等[74]在对QDs的研究中用两亲性大分子--聚马来酸酐十八醇酯(PMAO)包裹合金CuInZnxS2+xQDs(ZCIS QDs)以增加它的水溶性,并将这些纳米晶体用于HER2阳性细胞的靶向定位,结果表明,该QDs可安全、有效地选择性标记SKBR3癌细胞(HER2阳性)。国内有研究者将小蛋白亲合体分子稳定结合在QDs上获得荧光分子探针AF-QDs,并用于人A549肺癌细胞表面HER2蛋白的荧光显像[75],这种一步合成法不仅避免了复杂的化学结合过程,且能有效地与肿瘤细胞表面的HER2分子特异性结合。

    • HER2是一种高表达于多种癌细胞的肿瘤标志物,尤其是在乳腺癌和非小细胞肺癌。HER2表达分子显像为临床对癌灶的定位诊断、靶向治疗和预后评估提供了有利条件。目前处于研究阶段的各种靶向分子均有潜在应用价值,但也各有利弊。完整抗体和F(ab′)2片段虽能特异性结合HER2,但对HER2阳性病变的检出尚缺乏敏感性;而亲和体和纳米抗体等非免疫球蛋白的小分子配体因其分子质量小,可在肿瘤组织中充分扩散,在非肿瘤组织中摄取较少等优势在HER2分子影像发展中具有潜在价值。用于HER2分子影像的PET、SPECT、MR、超声及光学分子探针的构建均建立在HER2靶向配体的基础上,这些分子探针对HER2具有高亲和力,其发射出的各种信号能被探测仪器在体外检测到,对HER2阳性病变的无创性诊断、预后与辅助治疗具有重要临床价值。

参考文献 (75)

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