shRNA干扰沉默Net1基因对电离辐射损伤反应的影响

徐畅 王彦 杜利清 曹嘉 刘强

引用本文:
Citation:

shRNA干扰沉默Net1基因对电离辐射损伤反应的影响

    通讯作者: 刘强, liuqiang@irm-cams.ac.cn; liuqiang@irm-cams.ac.cn
  • 基金项目:

    中国医学科学院放射医学研究所引进人才启动基金 所人1232

    协和青年基金和中央高校基本科研业务费专项资金 2012G01

    国家自然科学基金 31200634

    天津市回国人员绿色通道项目 12JCYBJC32900

    协和青年基金和中央高校基本科研业务费专项资金 2012J05

The effects of short hairpin RNA-mediated silencing Net1 on ionizing radiation-induced damage responses

  • 摘要: 目的 研究神经上皮细胞转化基因1(NET1)在电离辐射损伤反应中的生物学功能。 方法 运用RNA干扰技术,在细胞中特异性沉默Net1基因,然后通过集落存活实验和免疫印迹法研究抑制Net1表达对细胞的电离辐射损伤反应的影响。 结果 Net1敲低表达的细胞对电离辐射的敏感性增强,表现为更多细胞发生了凋亡,并且在γ射线照射后,毛细血管扩张性共济失调症突变蛋白(ATM)和细胞周期检查点激酶2(Chk2)的磷酸化水平也比对照细胞增强。 结论 Net1对于受到电离辐射的细胞有一定的保护作用,很可能在电离辐射损伤修复中具有重要作用。
  • 图 1  沉默Net1增加细胞对电离辐射的敏感性

    图 2  抑制Net1表达促进电离辐射后的细胞凋亡

    图 3  抑制Net1刺激ATM-Chk2信号通路

  • [1] Wennerberg K, Der CJ. Rho-family GTPases:it's not only Rac and Rho(and I like it). J Cell Sci, 2004, 117(Pt 8):1301-1312.
    [2] Rossman KL, Der CJ, Sondek J. GEF means go:turning on RHO GTPases with guanine nucleotide-exchange factors. Nat Rev Mol Cell Biol, 2005, 6(2):167-180.
    [3] Schmidt A, Hall A. The Rho exchange factor Net1 is regulated by nuclear sequestration. J Biol Chem, 2002, 277(17):14581-14588. doi: 10.1074/jbc.M111108200
    [4] Guerra L, Carr HS, Richter-Dahlfors A, et al. A bacterial cytotoxin identifies the RhoA exchange factor Net1 as a key effector in the response to DNA damage. PLoS One, 2008, 3(5):e2254. doi: 10.1371/journal.pone.0002254
    [5] Dubash AD, Guilluy C, Srougi MC, et al. The small GTPase RhoA localizes to the nucleus and is activated by Net1 and DNA damage signals. PLoS One, 2011, 6(2):e17380. doi: 10.1371/journal.pone.0017380
    [6] Matsuoka S, Rotman G, Ogawa A, et al. Ataxia telangiectasia-mutated phosphorylates Chk2 in vivo and in vitro. Proc Natl Acad Sci USA, 2000, 97(19):10389-10394. doi: 10.1073/pnas.190030497
    [7] Frisan T, Cortes-Bratti X, Chaves-Olarte E, et al. The Haemophilus ducreyi cytolethal distending toxin induces DNA double-strand breaks and promotes ATM-dependent activation of RhoA. Cell Microbiol, 2003, 5(10):695-707. doi: 10.1046/j.1462-5822.2003.00311.x
  • [1] 刘光伟龚守良 . 细胞凋亡的线粒体调控机制与电离辐射. 国际放射医学核医学杂志, 2003, 27(2): 90-93.
    [2] 何子毅孟庆勇 . 电离辐射与细胞凋亡. 国际放射医学核医学杂志, 2004, 28(2): 90-93.
    [3] 路璐李德冠张俊伶黄颂邢永华王小春孟爱民 . RNA干扰沉默p16基因对小鼠胚胎成纤维细胞衰老的影响. 国际放射医学核医学杂志, 2014, 38(5): 281-284,303. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2014.05.001
    [4] 王璐李晴徐畅王彦杜利清王芹杨福军孙元明刘强 . siRNA干扰SIRT1对辐射后IL-6表达的影响. 国际放射医学核医学杂志, 2015, 39(5): 423-426. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2015.05.017
    [5] 王芹王敬敏徐畅杜利清王彦樊飞跃刘强 . 沉默XRCC2基因表达联合电离辐射对结肠癌细胞增殖能力的影响. 国际放射医学核医学杂志, 2015, 39(4): 282-286. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2015.04.002
    [6] 仁晓庆 . 放射抑制再狭窄的细胞及分子机制. 国际放射医学核医学杂志, 2000, 24(2): 89-92.
    [7] 龚守良刘树铮 . 生精细胞凋亡与电离辐射. 国际放射医学核医学杂志, 1999, 23(5): 227-230.
    [8] 边佩鲜杨冰王靖雅孙元明龙伟 . NICD表达下调对辐射损伤小鼠成骨细胞系MC3T3-E1增殖和功能基因表达的影响. 国际放射医学核医学杂志, 2018, 42(2): 135-142. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2018.02.007
    [9] 王小春刘金剑王月英吴红英李德冠褚丽萍刘强宋娜玲樊飞跃孟爱民 . SKP2表达对食管癌细胞辐射敏感性的影响. 国际放射医学核医学杂志, 2012, 36(2): 105-108. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2012.02.012
    [10] 杨英龚守良李修义 . T细胞共刺激反应与电离辐射. 国际放射医学核医学杂志, 1998, 22(5): 227-231.
    [11] 丁为民 . 电离辐射与细胞动力学. 国际放射医学核医学杂志, 2000, 24(3): 132-135.
  • 加载中
图(3)
计量
  • 文章访问数:  2314
  • HTML全文浏览量:  962
  • PDF下载量:  4
出版历程
  • 收稿日期:  2013-04-15
  • 刊出日期:  2013-05-25

shRNA干扰沉默Net1基因对电离辐射损伤反应的影响

基金项目:  中国医学科学院放射医学研究所引进人才启动基金 所人1232协和青年基金和中央高校基本科研业务费专项资金 2012G01国家自然科学基金 31200634天津市回国人员绿色通道项目 12JCYBJC32900协和青年基金和中央高校基本科研业务费专项资金 2012J05

摘要:  目的 研究神经上皮细胞转化基因1(NET1)在电离辐射损伤反应中的生物学功能。 方法 运用RNA干扰技术,在细胞中特异性沉默Net1基因,然后通过集落存活实验和免疫印迹法研究抑制Net1表达对细胞的电离辐射损伤反应的影响。 结果 Net1敲低表达的细胞对电离辐射的敏感性增强,表现为更多细胞发生了凋亡,并且在γ射线照射后,毛细血管扩张性共济失调症突变蛋白(ATM)和细胞周期检查点激酶2(Chk2)的磷酸化水平也比对照细胞增强。 结论 Net1对于受到电离辐射的细胞有一定的保护作用,很可能在电离辐射损伤修复中具有重要作用。

English Abstract

  • Rho即Ras相似物鸟苷三磷酸酶(Ras homologue guanosine triphosphatases,GTPase),是小GTPase家族(small GTPase family)中的一个亚家族。Rho蛋白亚家族在人类中已发现至少有25个成员,RhoA、Rac1和Cdc42是其中被研究得最多的3个小G蛋白[1]。Rho在细胞中参与调控很多生物学过程,包括细胞骨架组装、细胞运动、基因表达、细胞周期、细胞增殖和存活等。在参与细胞生理活动过程中,Rho分子呈现两种相互转换的形式:与鸟苷二磷酸(guanosine diphosphate,GDP)结合的非活化态以及与GTP结合的活化态。上游信号刺激使GDP从非活化态Rho蛋白中解离下来,并使Rho蛋白结合上GTP成为活化态,这一分子过程由鸟嘌呤核苷酸交换因子(guanine nucleotide exchange factors,GEFs)催化完成[2]。多数GEFs都在细胞质中发挥作用,但是RhoA的特异性GEF——神经上皮细胞转化基因1(neuroepithelioma transforming gene 1,Net1)却位于细胞核中[3]。既往研究表明,电离辐射会激活RhoA,从而促进肌动蛋白应力纤维的形成及细胞存活[4]。最新研究发现,正是位于细胞核中的Net1受到电离辐射刺激后激活RhoA[5]。但是关于Net1在电离辐射损伤反应中的生物学功能尚不清楚。因而本研究采用RNA干扰技术特异性沉默Net1,进一步探讨Net1表达对细胞的电离辐射损伤反应的影响。

    • 人宫颈癌HeLa细胞和人胚肾上皮细胞(293T细胞)由本实验室保存,用含10%胎牛血清(购自美国Gibco公司)的DMEM培养基,在37 ℃、5%CO2的条件下培养。携带Net1短发夹RNA(short hairpin RNA,shRNA)片段的慢病毒载体及病毒包装质粒均购自美国Sigma公司。RNeasy Mini试剂盒及QuantiTect反转录试剂盒均购自德国Qiagen公司。SYBR Green预混合物购自瑞士Roche公司。聚腺苷二磷酸核糖聚合酶(poly ADP-ribose polymerase,PARP)抗体、毛细血管扩张性共济失调症突变蛋白(ataxia-telangiectasia mutated,ATM)抗体、磷酸化ATM抗体、细胞周期检验点激酶2(checkpoint kinase 2,Chk2)抗体、磷酸化Chk2抗体、p38抗体和磷酸化p38抗体均购自美国Cell Signaling Technology;微管蛋白(tubulin)抗体和甘油醛-3-磷酸脱氢酶(glyceraldehyde-3-phosphote dehydrogenase,GAPDH)抗体购自北京康为世纪生物科技有限公司。细胞γ射线照射采用137Cs源(由加拿大原子能有限公司提供),剂量率为5 Gy/min。

    • 将携带Net1 shRNA或者shRNA对照片段的慢病毒载体与慢病毒包装质粒一同转染到293T细胞中。转染后48 h和72 h,两次收集细胞上清液,其中包含有成熟的慢病毒,并使用0.45 mm滤膜去除上清液中残留的细胞碎片,保存于-80 ℃冰箱中。

    • 病毒转染前1 d将细胞种植于6孔细胞培养板中。第2天,移弃孔中的培养基,换成1 ml新鲜培养基(含有终浓度为8 μg/ml的Polybrene),再加入1 ml含慢病毒的培养液,在细胞培养箱中孵育6 h后,更换成常规的新鲜培养基继续培养2~3 d,然后用嘌呤霉素(puromycin)筛选4~6 d。

    • 收集细胞,并用RNeasy Mini试剂盒提取细胞中的总RNA,然后用QuantiTect反转录试剂盒将mRNA反转录成cDNA。使用SYBR Green预混合物,按说明书要求添加引物和模板,每个PCR反应的总体积为20 μl。qPCR反应程序:95 ℃ 10 min激活DNA聚合酶;然后95 ℃ 15 s,60 ℃ 30 s,共40个循环;熔解曲线程序为机器默认设置。qPCR反应中所用引物如下:

      Net1引物:

      5’- GCTGACTCGGTGTGGATTGAT-TGG -3’

      5’- CGAAGGGTAAATGACTGTATT-GTTTGACC -3’

      Net1A引物:

      5’- GCAGAGAGAAAGATGATGA-TGTTG -3’

      5’- TAAATCCTGTTCACCTCGGG-AC -3’

      GAPDH引物:

      5’- GGAAGGTGAAGGTCGGA-GTC -3’

      5’-GCTCCTGGAAGATGGTGA-TG -3’

    • 对稳定转染Net1 shRNA或者shRNA的HeLa细胞进行2 Gy或4 Gy的γ射线照射,照射后的细胞根据不同的照射剂量接种不同数量的细胞到60 mm直径培养皿中,每个剂量点设置2个接种浓度,每个浓度接种3个培养皿。等到集落形成之后,移去培养基,用含0.25%结晶紫的乙醇固定细胞并给细胞染色,流水洗净,计数大于50个细胞的集落数。实验重复3次。

    • 裂解细胞,提取总蛋白,测定总蛋白浓度。取40 μg总蛋白上样,经十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳后,采用半干转移法将蛋白转移到硝酸纤维素膜上,5%脱脂奶粉室温封闭1 h,于4 ℃一抗孵育过夜,室温二抗孵育1 h,加显色剂显色曝光。

    • 采用SPSS13.0软件进行独立样本t检验,数据以均数±标准差($\bar x \pm s$)表示。P < 0.05表示差异有统计学意义。

    • 细胞中的Net1蛋白存在两种同源异构体:Net1蛋白和Net1A蛋白,即它们由同一基因编码,但Net1A蛋白产物比Net1蛋白产物缺少N端的145个氨基酸。由于我们所使用的Net1 shRNA的靶序列位于两个同源异构体的共同区域内,为了区分这两种相似的同源异构体的敲低效果,我们设计了特异性的PCR引物来分别检测这两种同源异构体的相对mRNA水平。由图 1a可见,在被慢病毒介导的Net1 shRNA转染的HeLa细胞中,Net1和Net1A的相对mRNA水平都显著下降(Net1:t=19.88,P < 0.01;Net1A:t=3.131,P < 0.05),表明Net1 shRNA能有效地沉默Net1基因。集落存活实验统计结果见图 1b,在2 Gy照射下,敲低Net1细胞的集落形成率为24.2%,与对照组细胞的集落形成率(37.3%)相比明显下降,两者间差异具有统计学意义(t=3.816,P < 0.05);在4 Gy照射下,对照组细胞集落形成率为15.3%,与之相比,敲低Net1细胞的集落形成率(3.4%)下降更明显(t=12.49,P < 0.01),表明当细胞中缺少Net1时其对电离辐射的敏感性增加。

      图  1  沉默Net1增加细胞对电离辐射的敏感性

    • 受到γ射线照射的Net1缺失细胞的集落形成率显著降低,是否由于加大辐射剂量后细胞凋亡程度所致?为了回答这个问题,我们在细胞接受γ射线照射后的不同时间点取样,采用免疫印迹法检测PARP水平,因为PARP的蛋白酶解是细胞凋亡的一个早期分子标志。在细胞凋亡启动时,相对分子质量为116×103的PARP在Asp216-Gly217之间被caspase-3剪切成85 ×103和31 ×103两个片段。如图 2所示,在对照组细胞中,从照射后24 h才开始出现PARP裂解产物(85 ×103);而在抑制Net1表达的细胞中,85 ×103的裂解产物在照射后2 h就出现,并且裂解产物的水平比相对应的对照细胞中的水平明显增加,表明当细胞中缺少Net1时,电离辐射会导致更多的细胞进行程序性死亡。

      图  2  抑制Net1表达促进电离辐射后的细胞凋亡

    • 电离辐射对细胞造成的最直接损伤是引起DNA损伤,并以DNA双链断裂为主。细胞为了维持基因组的稳定性,在长期进化过程中形成了DNA损伤应激系统,由许多蛋白激酶、损伤效应分子及修复蛋白组成不同的信号通路。其中,ATM-Chk2信号通路是应对DNA双链断裂最常见的一条通路,而且这些蛋白激酶特异位点磷酸化的强度可以反映它们的活性程度,因此我们首先使用免疫印迹法检测了ATM和Chk2的激活情况。由图 3可见,γ射线照射后,在Net1受到抑制的细胞中磷酸化ATM与磷酸化Chk2的水平都比对照组细胞增多,并且照射后出现的时间也比在对照组中提前,表明ATM和Chk2在缺少Net1的情况下更易被激活。另外,p38丝裂原活化蛋白激酶途径也是一条重要的DNA双链断裂应激通路,所以我们也检测了电离辐射激活p38的情况,发现Net1是否存在对p38的磷酸化没有明显影响,表明Net1可能不影响p38应激通路。

      图  3  抑制Net1刺激ATM-Chk2信号通路

    • 由于Rho蛋白和GEFs在细胞中主要定位于细胞质中或质膜上,以往认为在细胞核中GEFs是没有活性的,如Net1,它只有转移到细胞质中才能激活Rho蛋白。然而,最近Dubash等[5]研究发现,Net1在细胞核中具有活性,当细胞受到电离辐射刺激后,Net1能在细胞核中直接激活RhoA。因此,Net1很可能是电离辐射损伤反应中RhoA通路中的损伤感应分子。研究Net1的生物学功能,将为电离辐射损伤分子机制的研究开辟新的领域,并将为在医学领域开发和利用Net1和RhoA提供基础理论依据。

      本实验旨在研究Net1在电离辐射反应中的生物学功能。通过慢病毒介导的Net1 shRNA稳定降低HeLa细胞中Net1和Net1A的表达,使得细胞对电离辐射的敏感性显著增强,而且辐射后大量细胞提早进入细胞凋亡程序,甚至少量未受到照射的细胞也走向凋亡,表明Net1和(或)Net1A在DNA损伤修复中发挥着重要作用,提示Net1对于受照射的细胞具有一定的辐射保护作用。但是,由于所使用的Net1 shRNA不能区分Net1和Net1A这两个同源异构体,所以到底是Net1起作用,或是Net1A起作用,还是两者的共同作用,还有待今后的进一步研究。

      此外,本研究还探讨了在辐射损伤反应中可能与Net1相关的信号通路。电离辐射导致DNA双链断裂,该DNA损伤信号通常会磷酸化ATM和Chk2使其转变为活性状态,从而激活下游一系列DNA损伤修复中的效应分子,因此,ATM-Chk2信号通路是电离辐射损伤反应中一条至关重要的信号转导通路[6]。我们发现,在细胞缺失Net1时,电离辐射导致ATM和Chk2提前激活并且活性程度比对照组细胞强,而且ATM和Chk2被激活的时间也比对照组细胞长,提示Net1缺陷细胞中DNA修复能力可能降低,以致于无法被修复的DNA损伤累积,导致更多的ATM和Chk2被激活。另一方面,有文献报道,在ATM缺陷细胞中,DNA损伤对RhoA的激活被抑制[7],提示Net1-RhoA损伤反应通路可能位于ATM激酶的下游。Net1-RhoA通路与ATM-Chk2信号通路之间的相互关系还需要进一步研究。

      综上所述,本研究结果显示,Net1在电离辐射损伤反应中具有保护细胞的重要生物学功能,提示Net1在辐射损伤修复中具有重要作用,具体的机制需进一步深入研究。

参考文献 (7)

目录

    /

    返回文章
    返回