肿瘤乏氧显像剂的研究进展

汪会 徐慧琴

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肿瘤乏氧显像剂的研究进展

    通讯作者: 徐慧琴, hfxuhuiqin@163.com
  • 基金项目:

    安徽省科技计划项目 10021303025

Advances in study of tumor hypoxia imaging agents

    Corresponding author: Hui-qin XU, hfxuhuiqin@163.com
  • 摘要: 实体瘤快速生长, 中央区血供不充分, 导致乏氧区存在。而乏氧肿瘤细胞是影响肿瘤治疗效果的主要因素。乏氧显像剂能选择性地滞留在乏氧组织或细胞中, 通过PET或SPECT可无创性评估实体瘤的乏氧状态, 对肿瘤的治疗指导、疗效评价和预后判断具有很大的实用价值。该文简要介绍了乏氧显像剂的研究进展。
  • [1] Nakamura S. Structure of Azomycin, a new antibiotic. Pharm Bull, 1955, 3(5): 379-383. doi: 10.1248/cpb1953.3.379
    [2] Troost EG, Laverman P, Philippens ME, et al. Correlation of[18F] FMISO autoradiography and pimonidazole immunohistochemistry in human head and neck carcinoma xenografts. Eur J Nucl Med Mol Iamging, 2008, 35(10): 1803-1811. doi: 10.1007/s00259-008-0772-7
    [3] Valable S, Petit E, Roussel S, et al. Complementary information from magnetic resonance imaging and 18F-fluoromisonidazole positron emission tomography in the assessment of the response to an antiangiogenic treatment in a rat brain tumor model. Nucl Med Biol, 2011, 38(6): 781-793.
    [4] Rajendran JG, Schwartz DL, O'Sullivan J, et al. Tumor hypoxia imaging with [18F] fluoromisonidazole positron emission tomography in head and neck cancer. Clin Cancer Res, 2006, 12(18): 5435-5441. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-05-1773
    [5] Kurihara H, Honda N, Kono Y, et al. Radiolabelled agents for PET imaging of tumor hypoxia. Curr Med Chem, 2012, 19(20): 3283-3269.
    [6] Yamamoto Y, Maeda Y, Kawai N, et al. Hypoxia assessed by 18F-fluoromisonidazole positron emission tomography in newly diagnosed gliomas. Nucl Med Commun, 2012, 33(6): 621-625.
    [7] Hayashi K, Furutsuka K, Takei M, et al. High-yield automated synthesis of [18F] fluoroazomycin arabinoside ([18F]FAZA) for hypoxia-specific tumor imaging. Appl Radiat Isot, 2011, 69(7): 1007-1013. doi: 10.1016/j.apradiso.2011.02.025
    [8] Bouvet VR, Wuest M, Wiebe LI, et al. Synthesis of hypoxia imaging agent 1-(5-deoxy-5-fluoro-α-D-arabinofuranosyl)-2-nitroimidazole using microfluidic technology. Nucl Med Biol, 2011, 38(2): 235-245.
    [9] Mortensen LS, Busk M, Nordsmark M, et al. Accessing radiation response using hypoxia PET imaging and oxygen sensitive electrodes: a preclinical study. Radiother Oncol, 2011, 99(3): 418-423.
    [10] Zha Z, Zhu L, Liu Y, et al. Synthesis and evaluation of two novel 2-nitroimidazole derivatives as potential PET radioligands for tumor imaging. Nucl Med Biol, 2011, 38(4): 501-508.
    [11] Vercellino L, Groheux D, Thoury A, et al. Hypoxia imaging of uterine cervix carcinoma with 18F-FETNIM PET-CT. Clin Nucl Med, 2012, 37(11): 1065-1068. doi: 10.1097/RLU.0b013e3182638e7e
    [12] Chen L, Zhang Z, Kolb HC, et al. 18F-HX4 hypoxia imaging with PET-CT in head and neck cancer: a comparison with 18F-FMISO. Nucl Med Commun, 2012, 33(10): 1096-1102. doi: 10.1097/MNM.0b013e3283571016
    [13] Mahy P, De Bast M, Gillart J, et al. Detection of tumour hypoxia: comparison between EF5 adducts and [18F]-EF3 uptake on an individual mouse tumour basis. Eur J Nucl Med Mol Imaging, 2006, 33(5): 553-556. doi: 10.1007/s00259-005-0049-3
    [14] Mahy P, De Bast M, De Groot T, et al. Comparative pharma-cokinetics, biodistribution, metabolism and hypoxia-dependent uptake of[18F]-EF3 and[18F]-MISO in rodent tumor models. Radiother Oncol, 2008, 89(3): 353-360.
    [15] Dubois L, Landuyt W, Cloetens L, et al. [18F]EF3 is not superior to [18F] FMISO for PET-based hypoxia evaluation as measured in a rat rhabdomyosarcoma tumour model. Eur J Nucl Med Mol Imaging, 2009, 36(2): 209-218. doi: 10.1007/s00259-008-0907-x
    [16] Reischl G, Dorow DS, Cullinance C, et al. Imaging of tumor hypoxia with [124I]IAZA in comparison with [18F]FMISO and [18F]FAZA—first small animal PET results. J Pharm Pharm Sci, 2007, 10(2): 203-211.
    [17] Riedl CC, Brader P, Zanzonico P, et al. Tumor hypoxia imaging in orthotopic liver tumors and peritoneal metastasis: a comparative study featuring dynamic 18F-MISO and 124I-IAZG PET in the same study cohort. Eur J Nucl Med Mol Imaging, 2008, 35(1): 39-46. doi: 10.1007/s00259-007-0522-2
    [18] Vera P, Bohn P, Edet-Sanson A, et al. Simultaneous positron emission tomography(PET) assessment of metabolism with 18F-fluoro-2-deoxy-d-glucose(FDG), proliferation with 18F-fluoro-thymidine(FLT), and hypoxia with 18Fluoro-misonidazole(F-miso) before and during radiotherapy in patients with non-small-cell lung cancer(NSCLC): a pilot study. Radiother Oncol, 2011, 98(1): 109-116.
    [19] Christian N, Deheneffe S, Bol A, et al. Is 18F-FDG a surrogate tracer to measure tumor hypoxia? Comparison with the hypoxic tracer 14C-EF3 in animal tumor models. Radiother Oncol, 2010, 97(2): 183-188.
    [20] Kaira K, Endo M, Abe M, et al. Biologic correlates of 18F-FDG uptake on PET in pulmonary pleomorphic carcinoma. Lung Cancer, 2011, 71(2): 144-150.
    [21] Yoshii Y, Yoneda M, Ikawa M, et al. Radiolabeled Cu-ATSM as a novel indicator of overreduced intracellular state due to mitochondrial dysfunction: studies with mitochondrial DNA-less ρ0 cells and cybrids carrying MELAS mitochondrial DNA mutation. Nucl Med Biol, 2012, 39(2): 177-185.
    [22] Dence CS, Ponde DE, Welch MJ, et al. Autoradiographic and small-animal PET comparisons between 18F-FMISO, 18F-FDG, 18F-FLT and the hypoxia selective 64Cu-ATSM in a rodent model of cancer. Nucl Med Biol, 2008, 35(6): 713-20. doi: 10.1016/j.nucmedbio.2008.06.001
    [23] Grigsby PW, Malyapa RS, Hiqashikubo R, et al. Comparison of molecular markers of hypoxia and imaging with 60Cu-ATSM in cancer of the uterine cervix. Mol Imaging Biol, 2007, 9(5): 278-283.
    [24] Sun X, Chu T, Wang X. Preliminary studies of 99mTc-BnAO and its analogues: synthesis, radiolabeling and in vitro cell uptake. Nucl Med Biol, 2010, 37(2): 117-123.
    [25] Lee BF, Wang LW, Lin SH, et al. Tc-99m-HL91 imaging in the early detection of neuronal injury in a neonatal rat model of hypoxic ischemia. Crit Care Med, 2012, 40(6): 1930-1938.
  • [1] 周敏魏秋霞林俊杰陈丽丽 . 良恶性肿瘤18F-FDG符合线路显像的临床价值. 国际放射医学核医学杂志, 2011, 35(5): 279-281. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2011.05.006
    [2] 张弘蒋宁一 . 心肌乏氧显像及其临床应用. 国际放射医学核医学杂志, 2004, 28(3): 113-117.
    [3] 陈立陈跃 . 分化型甲状腺癌骨转移诊断及疗效评价的核素显像研究进展. 国际放射医学核医学杂志, 2016, 40(6): 452-458. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2016.06.010
    [4] 秦丽军李万婷武志芳陆克义刘建中胡光李思进刘海燕99Tcm-MDP SPECT/CT骨显像在绝经后女性骨质疏松性胸腰椎椎体骨折中的增益价值. 国际放射医学核医学杂志, 2017, 41(3): 173-177. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2017.03.003
    [5] 田亚东袁卫红 . 影像学及肿瘤相关抗原在诊断肺癌中的应用. 国际放射医学核医学杂志, 2011, 35(5): 295-299. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2011.05.011
    [6] 孙娜赵晋华乔文礼 . 胶质瘤显像剂的研究与应用进展. 国际放射医学核医学杂志, 2011, 35(6): 330-334. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2011.06.003
    [7] 安淑娴宋少莉黄钢 . 放射性核素标记的凋亡显像剂的研究进展. 国际放射医学核医学杂志, 2015, 39(6): 470-477. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2015.06.008
    [8] 陈鹏宋长祥陆武刘永袁小帅杜鹏 . SPECT同机定位CT引导经皮肺穿刺活检术联合肿瘤标志物检测对周围型肺癌的诊断价值. 国际放射医学核医学杂志, 2018, 42(1): 21-24, 29. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2018.01.004
    [9] 汪太松赵晋华宋建华 . PET-MRI和多模式肿瘤显像. 国际放射医学核医学杂志, 2011, 35(5): 261-264. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2011.05.002
    [10] 南楠朱小华 . 分化型甲状腺癌131I显像假阳性的原因分析. 国际放射医学核医学杂志, 2018, 42(1): 62-68. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2018.01.012
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出版历程
  • 收稿日期:  2012-09-07
  • 刊出日期:  2012-11-25

肿瘤乏氧显像剂的研究进展

    通讯作者: 徐慧琴, hfxuhuiqin@163.com
  • 230022 合肥, 安徽医科大学第一附属医院核医学科
基金项目:  安徽省科技计划项目 10021303025

摘要: 实体瘤快速生长, 中央区血供不充分, 导致乏氧区存在。而乏氧肿瘤细胞是影响肿瘤治疗效果的主要因素。乏氧显像剂能选择性地滞留在乏氧组织或细胞中, 通过PET或SPECT可无创性评估实体瘤的乏氧状态, 对肿瘤的治疗指导、疗效评价和预后判断具有很大的实用价值。该文简要介绍了乏氧显像剂的研究进展。

English Abstract

  • 实体肿瘤在快速生长过程中都会出现不同程度的乏氧。肿瘤乏氧细胞在新陈代谢、分子遗传学及病理生理等方面发生改变, 从而在肿瘤的进展过程中起着非常重要的作用, 且乏氧细胞对放化疗的抗性增加, 影响肿瘤的治疗效果, 导致肿瘤局部复发及远处转移等。目前, 肿瘤乏氧检测方法如氧电极测定、组织形态分析、DNA断裂分析、肿瘤内源性乏氧标志物(如乏氧诱导因子1α等)的测定等因有创性、可重复性小和不能动态监测等缺点而使其应用受到限制。近年来, 核医学乏氧显像作为一种非侵入性、可重复的乏氧探测方法受到学者的广泛关注, 乏氧显像剂选择性滞留在乏氧组织或细胞中, 再通过PET或SPECT直接显示肿瘤组织的乏氧程度。乏氧显像剂在肿瘤的乏氧诊断、治疗指导、疗效评价及预后判断等方面具有非常重要的价值。

    1955年, Nakamura[1]发现5-硝基咪唑能迅速抗厌氧菌感染, 5-硝基咪唑在乏氧环境中的这种特性, 可用于体内乏氧组织显像的研究。20世纪80年代初, 放射性核素标记的硝基杂环化合物作为乏氧显像剂用于PET或SPECT, 以测定组织中的氧水平。最初研究的乏氧显像剂主要是放射性核素标记的硝基咪唑及其衍生物, 现如今大量的放射性核素标记的乏氧显像剂已广泛用于实验研究及临床。

    • 硝基咪唑类化合物在乏氧组织中显像的原理是:硝基咪唑具有亲脂性, 其水分离系数为0.42, 很容易从血液扩散到组织中。进入细胞后在细胞内酶(主要是黄嘌呤氧化酶)的作用下, 硝基咪唑类化合物中的硝基被还原, 产生阴离子自由基。在正常氧水平细胞中, 阴离子自由基被氧化成化合物, 从而扩散到细胞外; 而在乏氧细胞中, 阴离子自由基不能发生氧化, 此时它与细胞内组分结合并滞留在细胞中。常见的硝基咪唑类乏氧组织显像剂包括:18F-氟硝基咪唑(18F-fluoromisonidazole, 18F-FMISO)、18F-1-α-D-[5′-脱氧-5′-氟阿拉伯呋喃糖基]-2-硝基咪唑(18F-fluoroazomycin arabinoside, 18F-FAZA)、18F-氟赤硝基咪唑(18F-fluoroerythronitroimidazole, 18F-FETNIM)、4-((2-硝基-1H-咪唑基)甲基-1H-1, 2, 3-三唑-3-(2-硝基苯磺酰氧基)丙醇乙酯[4-((2-nitro-1H-imidazol-1-yl)methyl)-1H-1, 2, 3, -triazol-1-yl)-propan-1-ol, HX4]、2-(2-硝基-1H-咪唑基)-N-甲基-(2, 2, 3, 3, 3-五氟丙基)乙酰胺[2-(2-nitro-1H-imidazol-yl)-N-(2, 2, 3, 3, 3-pentafluoropropyl)acetamide, EF5]、2-(2-硝基-1H-咪唑基-N-甲基-3, 3, 3-三氟异丙基)乙酰胺[2-(2-nitro-1H-imidazol-yl)-N-(3, 3, 3-trifluoro-propyl)acetamide, EF3]、123I-碘代硝基咪唑核苷(123I-iodoazomycin arabinoside, 123I-IAZA)、124I-IAZA、碘代硝基咪唑半乳糖苷(iodoazomycin galactoside, IAZG)、碘代硝基咪唑吡喃半乳糖苷(iodoazomycin galactopyranoside, IAZGP)等。

    • 通过18F-epifluorohydrin和2-nitroimidazole反应来制备的18F-FMISO, 是临床上最早的用18F标记的乏氧组织显像剂, 目前已经实现自动化合成。将FMISO标记上18F形成发射正电子的示踪剂, 利用PET-CT可在体外探测18F-FMISO的湮灭辐射信号, 从而得到其在体内的分布图像。Troost等[2]对10种不同的人类头颈部肿瘤鼠移植瘤模型进行18F-FMISO标记放射自显影, 并与乏氧标记物哌莫硝唑(pimonidazole)标记的免疫组织化学染色结果进行对比, 研究发现放射自显影图像中的信号强度与哌莫硝唑染色的乏氧部分显著相关。Valable等[3]对鼠脑胶质瘤模型行18F-FMISO PET, 结果显示:18F-FMISO注入后积聚在脑周围组织中, 随后开始进入脑实质, 约在注入后50 min时, 健康大脑中18F-FMISO达到最大摄取值; 注入后1.5 h可在PET图像中区分乏氧与常氧组织; 2~2.5 h可观察到最大肿瘤/健康脑组织值, 显像图像较清晰。Rajendran等[4]对73例活检证实为鳞癌的头颈部肿瘤患者于治疗前行18F-FMISO PET, 在显像结果不参与治疗计划的制定的情况下, 其中58例(79%)患者被证实有显著的乏氧, 18F-FMISO的肿瘤/血流最大值的平均值为1.6, 平均乏氧体积为40.2 ml, 中位随访72周后对实验数据进行统计学分析发现, 肿瘤/血流最大值、平均乏氧体积均与患者的预后显著相关, 证实18F-FMISO PET可以判断头颈部肿瘤患者的预后, 同时也证明18F-FMISO PET检测肿瘤乏氧区的可行性和实用性。18F-FMISO在临床及科研上作为乏氧显像剂的价值已得到国内外公认, 并用于多种肿瘤乏氧显像的临床研究[5-6], 然而它的缺点是存在神经毒性和软组织吸收, 且在肿瘤中浓聚较慢, 18F-FMISO PET的靶/本底值较低, 图像质量欠佳。为克服这些缺点, 第二代的硝基咪唑类显像剂如18F-FAZA、18F-FETNIM、18F-HX4等正被广泛研究。

    • 18F-FAZA用于PET检查, 其靶/本底值、肿瘤/肌肉值、肿瘤/血流值均较高, 是一种图像质量非常高的乏氧显像剂。与18F-FMISO相比, 18F-FAZA具有更快的血液和非靶组织清除率, 18F-FMISO主要通过肝脏代谢, 18F-FAZA则主要经肾脏排泄, 肠道内放射性低, 对于腹部肿瘤显像具有明显的优势。多项研究已证实18F-FAZA作为乏氧显像剂的可行性以及较高的图像质量, 并可根据其显像结果确定乏氧区, 从而制定放疗方案, 且高的18F-FAZA摄取值是肿瘤预后不良的独立预测因子[7-9]

    • 18F-FMISO的结构稍加改造, 即可得到亲水性强、毒性低、正常组织摄取较低的18F-FETNIM, 它在脑和骨骼中分布较少, 在肾和肠中分布较多, 且体内消除速率快, 是近年来的研究热点。18F-FETNIM的周围组织代谢率、脱氟率和乏氧组织代谢率均适用于PET, 且优于18F-FMISO, 是一种高度稳定、耐用的放射性显像剂。然而18F-FETNIM在组织中早期的摄取值是非常多变的, 受局部血流灌注的影响较大。研究表明18F-FETNIM反映肿瘤乏氧和氧合状态的效果是比较满意的, 且治疗后生存周期短的患者往往治疗前就有较高的18F-FETNIM摄取值, 18F-FETNIM PET与18F-3′-脱氧-3′-氟代胸苷PET联合显像能为放射治疗确定乏氧和再增殖生物学靶区, 以通过剂量调强放疗提高再增殖和乏氧区域的放疗剂量, 从而提高肿瘤的局部控制率和患者的远期生存质量[10-11]

    • 18F-HX4的制备方法简单、方便, 能选择性地浓聚于恶性肿瘤, 可用于肿瘤组织乏氧情况的检测, 主要涉及肾脏及胆囊, 与肠道无关。18F-HX4将有可能克服18F-FMISO无法用于腹部空腔脏器显像的缺陷, 是近年来研究的一种新型乏氧显像剂。有研究报道18F-HX4注入体内后1.5 h, 肿瘤/肌肉值与18F-FMISO注入后2 h相似, 分别为1.94±1.03和1.85±1.01, 且18F-HX4较18F-FMISO有更高的乏氧组织敏感性和特异性[12], 其应用前景广阔。

    • 18F-EF5注入体内后, 能快速、均匀地分布到所有组织, 并且在体内的稳定性高, 是一种非侵入性评估肿瘤乏氧的有效方法。18F-EF5注入肿瘤患者体内后, 4~6 h肿瘤组织显像清晰, 且辐射剂量在安全范围内, 不同类型的肿瘤均可采用18F-EF5 PET进行乏氧显像[13]。Mahy等[14]分析了不同氧浓度下18F-EF3的药代动力学及生物学分布情况, 同时对18F-EF3和18F-EF5在同一模型中用免疫荧光检测方法进行对比, 结果显示:18F-EF3的摄取量与氧浓度呈负相关, 18F-EF3与18F-EF5的肿瘤/肌肉值相关。18F-EF3的药代动力学、生物学分布、代谢产物均与18F-FMISO相似, 在注射后4 h, 两者有相似的瘤内分布, 但18F-EF3对乏氧的特异性较18F-FMISO差, 说明18F-EF3并不比18F-FMISO更具优势[15]

    • 近年来对于肿瘤乏氧显像剂的研究越来越多, 如123I-IAZA和124I-IAZA, 123I-IAZA主要用于颅内肿瘤乏氧的临床研究, 但123I-IAZA并非理想的乏氧组织显像剂, 主要因为它在体内吸收不稳定、个体差异大、有效半衰期长达8~12 h, 且易浓聚于甲状腺。Reischl等[16]对人皮肤基底细胞肿瘤A431的荷瘤雌性裸鼠分别采用124I-IAZA、18F-FAZA、18F-FMISO作为乏氧显像剂进行micro PET的对比结果显示:18F-FAZA的肿瘤/本底值高于18F-FMISO和124I-IAZA, 虽然124I-IAZA的肿瘤/本底值随注入时间的增加而增加, 但其比值在短时间内仍然低于18F-FAZA。

      新一代放射性碘标记的IAZA类化合物如IAZG和IAZGP等, 脂溶性低, 体内清除较快。有研究报道124I-IAZG在注射后24~48 h图像质量达到最佳, 全身本底逐渐消失, 有很大的乏氧显像潜力。Riedl等[17]用鼠肝癌模型进行124I-IAZG PET乏氧显像, 并与18F-FMISO进行对比, 结果显示124I-IAZG的分布与18F-FMISO的分布呈正相关, 124I衰变射线中正电子含量较低, 需要注射的剂量较高, 且18F-FMISO在PET图像的质量上比124I-IAZG有明显优势。

    • 18F-FDG是葡萄糖类似物, 其在体内具有与葡萄糖相似的生物学行为, 在细胞内己糖激酶的作用下转变成6-磷酸-18F-脱氧葡萄糖, 由于6-磷酸-18F-脱氧葡萄糖不是糖酵解的底物, 不参与葡萄糖的进一步反应, 因此滞留在细胞内而显像。18F-FDG PET是一种非侵入性的功能显像方法, 常用于肿瘤的诊断、分期及疗效监测。肿瘤乏氧时, 乏氧诱导因子1增加, 由于在PET显像中18F-FDG的摄取主要依赖于乏氧诱导因子1控制下蛋白质的表达, 故肿瘤对18F-FDG的摄取值间接反映了乏氧的水平。与FMISO、FDG、FETNIM相比, 在肿瘤/血浆滞留值上, FDG最高, FETNIM次之, 但在肿瘤/肌肉滞留值上, FETNIM明显高于FDG和FMISO, 通过肿瘤的放射性自显影显示, 乏氧区域吸收的FETNIM要比正常区域多[18]。多项研究表明, 18F-FDG摄取值与肿瘤乏氧密切相关, 但亦有学者认为肿瘤18F-FDG摄取值与乏氧无明显联系[19-20], 可见目前18F-FDG PET对肿瘤乏氧评估的意义仍存在争议。但18F-FDG是目前唯一被食品和药物管理局批准的可用于肿瘤PET显像的示踪剂, 目前广泛应用于各种肿瘤的诊断、分期、治疗指导、疗效评价及预后判断。

    • 另一种具有巨大潜力的PET乏氧显像剂是放射性铜与ATSM的金属络合物Cu-ATSM, 这是一种中性亲脂性分子, 具有较高的细胞膜渗透性, 当细胞乏氧时, 它能转变成[Cu-ATSM]-沉积在细胞中。然而其在体内的稳定性欠佳, 本底摄取水平较高, 也在一定程度上限制了其临床应用。一般常用的铜的4种同位素包括:60Cu(半衰期为0.4 h)、61Cu(半衰期为3.32 h)、62Cu(半衰期为0.16 h)、64Cu(半衰期为12.7 h), 18F-FMISO注射后2 h的摄取值与64Cu-ATSM注射后10 min或24 h时的摄取值显著相关, 而64Cu-ATSM注射后10 min的摄取值与18F-FDG的摄取值无明显相关性[21-22]。Grigsby等[23]研究了60Cu-ATSM在肿瘤组织中的摄取与乏氧相关分子标志物如血管内皮生长因子、表皮生长因子受体和碳酸杆酶9等的关系, 结果提示60Cu-ATSM是安全的放射性示踪剂, 可被用于获得高质量的肿瘤乏氧区图像, PET显像中60Cu-ATSM高摄取值与血管内皮生长因子、表皮生长因子受体和碳酸杆酶9等的高表达密切相关, 并提示预后较差。

    • SPECT虽然在图像质量及定量分析上不如PET, 但其优点是普及度广, 大中型医院均可行SPECT检查, 且价格相对便宜, 故SPECT乏氧显像剂亦被广泛研究。

    • 99Tcm标记的硝基衍生物是目前研究最多的用于SPECT的乏氧显像剂, 主要分为:BATO(boronic acid adduct of technetium dioxime)、PnAO(propylene amine oxime)、Schiff-base与BnAO(butylenes amine oxime)等4类。BMS181321是PnAO类中的一种, 也是第一个采用99Tcm标记的2-硝基咪唑类化合物, 曾被用于探测缺血心肌的乏氧状态, 但其脂溶性高、稳定性差、血液中清除速率慢、肿瘤/血流值与肿瘤/肌肉值均低, 故临床应用价值不大。BRU59-21是第二代BMS181321类似物, 其在体内外的稳定性高、清除速率快、肿瘤/血流值及肿瘤/肌肉值较高, 99Tcm-BRU59-21用于肿瘤的乏氧显像具有安全性、可行性及特异性[24]

      99Tcm-4, 9-二氮-3, 3, 10, 10-四甲基十二烷-2, 11-二酮肟(99Tcm-4, 9-diaza-3, 3, 10, 10-tetramethyldodecan-2, 11-dione dioxime, 99Tcm-HL91)的结构属于BnAO类, 其稳定性好、水溶性高、血液中清除速率快, 在一系列99Tcm标记的硝基衍生物中显示出了更高的靶/本底值。有研究表明, 在采用99Tcm-HL91作为乏氧显像剂的SPECT显像中, 肿瘤乏氧区的摄取值明显高于常氧区, 且99Tcm-HL91的摄取值能预测肿瘤治疗反应及生存率[25]

    • 123I-IAZA和124I-IAZA是早先研究较多的用于SPECT的乏氧显像剂。大量研究证明了其用于SPECT显像的可行性, 但其在体内不稳定、个体差异大、半衰期长、易浓聚于甲状腺等特点限制了其作为乏氧显像剂的临床应用。

    • 乏氧显像灵敏度的影响因素包括:乏氧显像剂在乏氧组织中的滞留量、滞留时间以及在正常组织中清除的速率, 临床上理想的肿瘤乏氧组织显像剂需具备以下条件:①无毒、体内稳定、制备简单及可重复性; ②易选择性地浓聚于乏氧组织或细胞中, 靶/本底值尽可能大, 一般要求大于3:1;③生物半衰期适于显像, 且在乏氧组织中有一定的滞留时间; ④在血液及正常组织中分布均匀、清除速率快; ⑤在患者可承受的辐射剂量内显像质量高, 注射与显像时间间隔短, 并具有提供量化的能力。

      综上所述, 检测肿瘤乏氧的最终目的是克服肿瘤乏氧细胞对放化疗的抵抗, 提高治疗疗效, 现已有许多硝基咪唑类和非硝基咪唑类乏氧显像剂用于临床或科研。随着国内外对肿瘤乏氧显像剂研究的不断深入以及核医学技术的发展, 更新、更理想的乏氧组织显像剂将会用于临床或科研。

参考文献 (25)

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