雌激素受体显像剂18F-16α-17β-氟雌二醇的自动化合成

郭莘 陈国宝 戴红峰 林美福 陈文新

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雌激素受体显像剂18F-16α-17β-氟雌二醇的自动化合成

    通讯作者: 陈文新, wenxinchzt@yahoo.com.cn

Automated synthesis of the estrogen receptors imaging agent 18F-FES

    Corresponding author: Wen-xin CHEN, wenxinchzt@yahoo.com.cn
  • 摘要: 目的 使用自动化合成装置Tracerlab FXFN,制备雌激素受体显像剂18F-16α-17β-氟雌二醇(18F-FES)。 方法 通过两步反应制备18F-FES:①18F-和3-O-(甲氧甲基)-16, 17-O-磺酰基-16-表雌二醇发生亲核取代反应;②生成物经HCl水解,重复两次后得到产物18F-FES。 结果 18F-FES的合成总时间约80 min,放化产率约为10%,放化纯度大于95%。 结论 整个合成过程自动化完成,操作简便,18F-FES毒性小,对人安全,体外较稳定,有望成为安全、有效的雌激素受体显像剂。
  • 图 1  18F-16α-17β-氟雌二醇的合成路线示意图

    图 2  家兔体内18F-FES分布的PET-CT图像

  • [1] 陈道宝, 杨红健. 乳腺癌ER与FES-CT. 中国肿瘤, 2008, 17(7): 588-592.
    [2] Mortimer JE, Dehdashti F, Siegel BA, et al. Positron emission tomograpgy with 2-[18F]fluoro-2-deoxy-D-glucose and 16α-[18F]fluoro-17β-estradiol in breast cancer: correlation with estrogen receptor status and response to systemic therapy. Clin Cancer Res, 1996, 2(6): 933-939.
    [3] Peterson LM, Mankoff DA, Lawton T, et al. Quantitative imaging of estrogen receptor expression in breast cancer with PET and18F-fluorosetradiol. J Nucl Med, 2008, 49(3): 367-374. doi: 10.2967/jnumed.107.047506
    [4] Oh SJ, Chi DY, Mosdzianowski C, et al. The automatic production of 16α-[18F]fluoroestradiol using a conventional[18F]FDG module with a disposable cassette system. Appl Radiat Isot, 2007, 65(6): 676-681. doi: 10.1016/j.apradiso.2006.06.016
    [5] Kumar P, Mercer J, Doerkson C, et al. Clinical production, stability studies and PET imaging with 16-α-[18F]fluoroestradiol([18F]FES)in ER positive breast cancer patients. J Pharm Pharm Sci, 2007, 10(2): 256s-265s.
    [6] Mori T, Kasamatsu S, Mosdzianowski C, et al. Automatic synthesis of 16alpha-[18F]fluoro-17beta-estradiol using a cassettetype[18F]fluorodeoxyglucose synthesizer. Nucl Med Biol, 2006, 33(2): 281-286. doi: 10.1016/j.nucmedbio.2005.11.002
    [7] 王明伟, 张勇平, 章英剑, 等. 乳腺癌雌激素受体分子影像探针16α-[18F]氟-17β-雌二醇的自动化合成. 核技术, 2009, 32(11): 839-844.
    [8] 国家药典委员会. 中华人民共和国药典. 2005版二部. 北京: 化学工业出版社, 2005.
    [9] Aliaga A, Rousseau JA, Ouellette R, et al. Breast cancer models to study the expression of estrogen receptors with small animal PET imaging. Nucl Med Biol, 2004, 31(6): 761-770. doi: 10.1016/j.nucmedbio.2004.02.011
  • [1] 赵雷杨雁孙华 . 自动化固相萃取法合成11C-乙酸盐的影响因素. 国际放射医学核医学杂志, 2015, 39(3): 224-227,234. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2015.03.008
    [2] 党永红蔡炯王玲吕京桥李方 . 4-18F-氟代丁酸及其甲酯作为PET显像剂可行性的初步研究. 国际放射医学核医学杂志, 2015, 39(3): 228-234. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2015.03.009
    [3] 何玉林张晓军李剑波张国建张锦明王雪梅 . 心肌脂肪酸代谢显像剂18F-FTHA的自动化合成与生物学分布研究. 国际放射医学核医学杂志, 2018, 42(6): 524-529. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2018.06.009
    [4] 张奇洲李毓斌李肖红秦永德11C-乙酸盐的自动化合成影响因素的考察及质量控制. 国际放射医学核医学杂志, 2016, 40(1): 6-12. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2016.01.002
    [5] 王月英王小春吴红英李德冠张恒宋娜玲褚丽萍路璐杜丽清王彦孟爱民 . 17aα-D-高炔雌二醇-3-乙酯联合γ射线照射对不同品系小鼠的抑瘤作用. 国际放射医学核医学杂志, 2012, 36(2): 97-100. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2012.02.010
    [6] 陈迪金璀珍 . 辐射细胞遗传学分析的自动化. 国际放射医学核医学杂志, 1994, 18(6): 241-244.
    [7] 王劲程亮唐明灯庄达君 . (N-[18F]氟甲基)胆碱的合成与质量控制. 国际放射医学核医学杂志, 2014, 38(3): 171-174. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2014.03.008
    [8] 何晓娃顾健德谢毓元125I-17-α-碘代乙烯基-11β-甲氧基雌二醇:一种高亲和性雌激素受体放射药物的体内外特性. 国际放射医学核医学杂志, 1985, 9(2): 128-129.
    [9] 陈素娟王永强李振甲 . 放射免疫分析技术自动化现状及展望. 国际放射医学核医学杂志, 1990, 14(2): 77-79.
    [10] 鄢敏秦志星程鹏亮郝新忠刘建中李思进武志芳 . 住友CLC模块在线优化合成13N-NH3·H2O的研究. 国际放射医学核医学杂志, 2014, 38(6): 360-362, 386. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2014.06.003
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出版历程
  • 收稿日期:  2010-11-16
  • 刊出日期:  2011-01-25

雌激素受体显像剂18F-16α-17β-氟雌二醇的自动化合成

    通讯作者: 陈文新, wenxinchzt@yahoo.com.cn
  • 1. 350001 福州, 福建医科大学省立临床学院
  • 2. 350001 福州, 福建省立医院PET-CT中心

摘要:  目的 使用自动化合成装置Tracerlab FXFN,制备雌激素受体显像剂18F-16α-17β-氟雌二醇(18F-FES)。 方法 通过两步反应制备18F-FES:①18F-和3-O-(甲氧甲基)-16, 17-O-磺酰基-16-表雌二醇发生亲核取代反应;②生成物经HCl水解,重复两次后得到产物18F-FES。 结果 18F-FES的合成总时间约80 min,放化产率约为10%,放化纯度大于95%。 结论 整个合成过程自动化完成,操作简便,18F-FES毒性小,对人安全,体外较稳定,有望成为安全、有效的雌激素受体显像剂。

English Abstract

  • 乳腺癌是常见的恶性肿瘤, 其早期诊断对治疗方案的选择具有重要意义。雌激素受体(estrogen receptor, ER)是乳腺癌发生、发展过程中最为重要的分子生物学标志物[1]。目前, 测定ER的方法主要以肿瘤标本免疫组化法为代表, 但该法为有创、离体测定, 存在取材难等诸多因素的影响和限制, 其对临床内分泌治疗疗效的预测也不够完美。18F-16α-17β-氟雌二醇(18F-16α-17β-fluoroestradiol, 18FFES)是一种雌激素类似物, 能够特异性地与ER结合, 能动态、定量、无创地反映肿瘤ER的生物活性[2-3], 因此, 18F-FES受体显像可为临床提供乳腺癌组织及转移灶内癌细胞的ER分布、密度变化及活动状态等方面的信息, 对于乳腺癌患者的早期诊断、是否采用激素治疗方案及其疗效评估等具有非常重要的价值。18F-FES PET受体显像有望成为比18F-FDG肿瘤代谢显像技术更具有特异性的方法。国外已有文献报道18F-FES的合成过程和方法, 但其步骤较为繁琐复杂[4-6]; 国内也有少量相关报道, 但未见高产率自动化合成的报道[7]。本研究对18FFES的自动化合成进行了探索。

    • MINItrace回旋加速器、Tracelab FXFN全自动合成装置、Discovery LS PET-CT扫描仪(GE公司, 美国), Mini-Scan型放射性薄层扫描仪(Bioscan公司, 美国), CRC-15PET型放射性活度计(CAPINTEC公司, 美国)。

      H218O(丰度97%, Isotec公司, 美国), Kryptofix 2.2.2、无水乙腈(药物级)、碳酸钾(ABX公司, 德国), HCl(Sigma-Aldrich公司, 德国), 3-O-(甲氧甲基)-16, 17-O-磺酰基-16-表雌二醇(3-O-methoxymethyl-16, 17-O-sulfuryl-16-epiestriol, MMSE)(江苏华益埃索托公司), Sep-Pak QMA柱、Sep-Pak Al2O3柱(Waters公司, 美国), Silicagel60TLCplasticsheets(Merck公司, 德国), 鲎试剂(灵敏度为0.5 EU/ml)、细菌内毒素工作标准品(10 EU/支)、细菌内毒素检查用水(内毒素 < 0.015 EU/ml)(福州新北生化工业有限公司)。

    • 雌性昆明小鼠(体质量为18~22 g)和雌性家兔(体质量为2.3~2.5 kg), 由福建省医学科学研究所动物实验中心提供。

    • (1) 生产18F-: 18F-由MINItrace回旋加速器通过18O(p, n)18F反应生产。

      (2) 收集和转移18F-: 18F-经QMA柱捕获后, 使用碳酸钾(3 mg溶于0.5 mlH2O)和Kryptofix 2.2.2 (15 mg溶于1 ml无水乙腈)的混合溶液将其洗脱并收集到反应瓶中, 溶液经氦气和真空干燥, 水汽由置于液氮中的冷肼吸收。

      (3) 亲核取代反应: 将1 mg MMSE溶于1 ml无水乙腈中, 加入反应瓶中, 100℃加热反应10 min。

      (4) 在生成物中加入6 ml 0.1 mol/L HCl(0.6 ml 1mol/LHCl加入5.4ml无水乙腈), 100℃下水解3min, 重复两次。

      (5) 粗产品通过Al2O3柱, 分离未反应的18F-和碳酸根离子。

      (6) 将初步纯化后的产品溶解于50%的乙醇淋洗液中, 用高效液相色谱法(high-performance liquid chromatography, HPLC)分离产物并进一步纯化(淋洗液为50%的乙醇溶液, 流速为4 ml/min), 紫外检测波长为280 nm, 用HPLC γ探头和紫外探头同时监测放射性峰), 收集25 min左右的放射性峰洗脱液。

      (7) 洗脱液经0.2 μm无菌滤膜过滤, 得到18FFES注射液。

      18F-FES合成示意图见图 1

      图  1  18F-16α-17β-氟雌二醇的合成路线示意图

    • (1) 一般理化性质: 用精密pH试纸测定18FFES注射液的pH值, 目测其颜色和澄清度。

      (2) 放射性浓度: 用放射性活度计测定18F-FES的放射性活度, 根据放射性活度和注射液体积计算放射性浓度。

      (3) 放射化学纯度测定: 用放射性薄层扫描仪测定18F-FES的放射化学纯度。扫描仪分析条件为: 硅胶60塑板, 层析液为乙腈: 水(体积比为95: 5的混合液)。

      (4) 细菌内毒素实验: 取装有0.1 ml鲎试剂的安瓿6支, 分为3组, 每组2只。其中, 第一组各加入0.1 ml18F-FES注射液, 作为供试品管; 第二组各加入0.1 ml用水溶解的细菌内毒素工作标准品, 制成浓度为2.0 λ的内毒素溶液, 作为阳性对照管; 第三组各加入0.1 ml细菌内毒素检查用水, 作为阴性对照管。将以上6支安瓿中的溶液轻轻混匀后封闭管口, 垂直放入(37±1)℃的恒温器中保温(60±2)min。

      (5) 无菌实验: 将18F-FES注射液送细菌室进行24 h细菌培养。

    • (1) 异常毒性实验: 取5只小鼠, 分别经尾静脉注射37 MBq18F-FES注射液, 其剂量相当于体重为60 kg的人用剂量的300倍, 对照组小鼠(5只)注射等体积的15%乙醇溶液; 将实验组小鼠与对照组小鼠共同饲养, 观察其生长情况, 48 h后处死小鼠并解剖, 观察其脏器损伤[8]

      (2) 初步动物体内分布实验: 将2只家兔麻醉, 分别经家兔耳缘静脉注射14.8 MBq18F-FES注射液(2只兔注射时间间隔30 min), 1 h后将其固定于纸板上, 用PET-CT仪进行扫描, 获得家兔体内18F-FES的分布图像。

    • 18F-FES的合成总时间约90 min, 放射性浓度为60.5 MBq/ml, 放化产率约为10%(未经衰变校正), 放射化学纯度大于95%, 室温放置6 h后性状稳定, 放化纯未见明显变化。

    • (1) 异常毒性实验: 与对照组相比, 实验组小鼠生长正常, 48 h内未见死亡及不良反应。解剖后观察, 未见脏器损伤。

      (2) 初步动物体内分布实验: 2只家兔的18FFES体内分布基本相似。18F-FES主要在肝脏代谢, 然后经胆道、肠道排泄, 在腋窝淋巴结、纵隔等与乳腺癌及其转移灶有关的部位本底较低, 18F-FES的体内分布与相关文献报道基本符合[9]

    • 18F-FES注射液的24 h细菌培养结果呈阴性, 细菌内毒素含量符合中国药典标准[8]

      图  2  家兔体内18F-FES分布的PET-CT图像

    • 自动化生产是取得快速、有效、可靠及符合药品生产质量管理规范标准的PET显像剂的重要保证, 并可减少工作人员在生产过程中接受的放射性照射剂量。国外已有文献报道18F-FES的合成过程和方法, 但其步骤较为繁琐复杂[4-6], 国内也有少量相关报道, 但无高产率自动化合成的报道[7]。因此, 研究18F-FES的高产率、自动化生产工艺具有一定的意义。

      本研究工艺合成步骤较简单, 反应过程中不需要分离中间产物, 可使用自动合成装置TracelabFXFN自动化合成, 但是由于生产中需经3次水解过程, 最终可能产生较多的中间产物, 导致目标产物的产率偏低。因此, 在生产中要严格控制水解条件, 特别是控制反应温度, 要在较短的时间内完成加热过程, 并将水解的过程维持在一定的温度范围内; 其次, 要保证水解中使用的HCl的浓度; 另外, 可适当增加前体的量, 使产率得到一定的提高。

      由于在使用HPLC纯化产物的过程中使用了50%的乙醇溶液作为淋洗液, 导致最终产物无法直接注射入人体, 需用生理盐水稀释至15%以下后才能使用(一般需加入13 ml以上的生理盐水), 这便造成了给患者注射的药液体积偏大, 可能引起患者疼痛或不适。为此, 可通过适当降低淋洗液的浓度(一般应在40%以上, 否则产物无法洗脱), 同时适当增加18F-的用量, 用以减少用药体积, 降低患者不适的可能性。另外, 为了避免较高浓度的淋洗液对HPLC纯化产物过程造成过大的压力, 淋洗液流速调节得较慢(1.5 ml/min), 这将导致出峰时间的延迟(一般在30 min左右), 延长了生产时间。为此, 可以在不对HPLC纯化产物过程造成过大压力的前提下, 适当地将流速调快, 使出峰时间提前至15~20 min, 本研究将其调整为3~4 ml/min, 缩短了生产时间。

      18F-FES的异常毒性实验结果表明, 18F-FES注射液毒性小, 对人安全; 体外稳定性实验表明, 其在体外较稳定, 有利于进一步的临床应用; 无菌和细菌内毒素实验结果表明, 其可安全地应用于临床。

    • 18F-FES的整个合成过程自动化完成, 操作简便, 所得注射液的各项指标均符合中国药典标准, 体外稳定性较好, 毒性小, 对人安全。但在生产中需进一步改进反应条件及操作方法以提高放化产率。初步动物体内分布实验结果表明, 18F-FES在乳腺癌常见的转移灶的本底较低, 有望成为安全、有效的ER显像剂。

参考文献 (9)

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