胰岛β细胞的分子核医学显像进展

乌海飞 尹红燕 刘帅 张一帆

引用本文:
Citation:

胰岛β细胞的分子核医学显像进展

    通讯作者: 张一帆, zhangyifan1992@yahoo.com.cn
  • 基金项目:

    上海市教委重点学科建设基金 S30203

Progress in molecular nuclear medicine imaging of pancreatic beta cells

    Corresponding author: Yi-fan ZHANG, zhangyifan1992@yahoo.com.cn
  • 摘要: 糖尿病是严重威胁人类健康的常见病和多发病。糖尿病主要是由于胰岛β细胞选择性破坏或胰岛β细胞分泌胰岛素迟缓和胰岛素抵抗而使胰岛素相对不足所致。β细胞的数量只有减少50%~60%时才会出现相关的症状。由于胰腺位置较深,β细胞含量少,目前临床诊断主要采用有创性方法,且难于进行早期诊断。因此,通过无创性的方法进行β细胞相关代谢疾病的早期诊断,越来越受到人们的关注,影像学诊断也就成了关注焦点,但是如何进行β细胞数量和功能的评估仍是目前影像学诊断面临的重要课题。
  • [1] Gimi B, Leoni L, Oberholzer J, etal. Functional MR microimaging of pancreatic beta-cell activation. Cell Transplant, 2006, 15(2): 195-203. doi: 10.3727/000000006783982151
    [2] Zhang S, TrokowskiR, Sherry AD. A paramagnetic CEST agent for imaging glucose by MRI. J Am Chem Soc, 2003, 125(50): 15288-15289. doi: 10.1021/ja038345f
    [3] Sweet IR, Cook DL, Lernmark A, et al. Systematic screening of potentialbeta-cellimaging agents. Biochem Biophys Res Commun, 2004, 314(4): 976-983. doi: 10.1016/j.bbrc.2003.12.182
    [4] Shiue CY, Schmitz A, Schirrmacher R, etal. Potentialapproaches for beta cellimaging with PET and SPECT. Curr Med Chem, 2004, 4(4): 271-280.
    [5] Schneider S, Feilen PJ, Schreckenberger M, et al. In vitro and in vivo evaluation of novel glibenclamide derivatives as imaging agents for the non-invasive assessment of the pancreatic islet cell mass in animals and humans. Exp Clin Endocrinol Diabetes, 2005, 113(7): 388-395. doi: 10.1055/s-2005-865711
    [6] Olsen KM, Kearns GL, Kemp SF. Glyburide protein binding and the effect of albumin glycation in children, young adults, and older adults with diabetes. J Clin Pharmacol, 1995, 35(7): 739-745. doi: 10.1002/j.1552-4604.1995.tb04115.x
    [7] Clark PB, Gage HD, Brown-ProctorC, etal. Neurofunctional imaging of the pancreas utilizing the cholinergic PET radioligand [18F]4-fluorobenzyltrozamicol. Eur J Nucl Med Mol Imaging, 2004, 31(2): 258-260. doi: 10.1007/s00259-003-1350-7
    [8] MaffeiA, Liu Z, WitkowskiP, etal. Identification of tissue restricted transcripts in human islets. Endocrinology, 2004, 145(10): 4513-4521. doi: 10.1210/en.2004-0691
    [9] Kung MP, Hou C, Lieberman BP, etal. In vivo imaging of beta-cell mass in rats using 18F-FP-(+)-DTBZ: a potential PET ligand for studying diabetes mellitus. J Nucl Med, 2008, 49(7): 1171-1176.
    [10] Eriksson O, Jahan M, Johnström P, etal. In vivo and in vitro characterization of [18F]-FE-(+)-DTBZ as a tracer for beta-cellmass. Nucl Med Biol, 2010, 37(3): 357-363. doi: 10.1016/j.nucmedbio.2009.12.004
    [11] Ladriěre L, Malaisse-Lagae F, Alejandro R, etal. Pancreatic fate of a(125)I-labelled mouse monoclonalantibody directed againstpancreatic B-cell surface ganglioside(s)in control and diabetic rats. Cell Biochem Funct, 2001, 19(2): 107-115. doi: 10.1002/cbf.903
    [12] Eng J, Kleinman WA, Singh L, etal. Isolation and characterization of exendin-4, an exendin-3 analogue, from Heloderma suspectum venom. Further evidence for an exendin receptor on dispersed acini from guinea pig pancreas. J Biol Chem, 1992, 267(11): 7402-7405.
    [13] Chen J, Yu L, Wang L, et al. Stability of synthetic exendin-4 in human plasma in vitro. Protein Pept Lett, 2007, 14(1): 19-25.
    [14] López de Maturana R, Willshaw A, Kuntzsch A, etal. The isolated N-terminaldomain of the glucagon-like peptide-1(GLP-1)receptor binds exendin peptides with much higher affinity than GLP-1. J Biol Chem, 2003, 278(12): 10195-10200. doi: 10.1074/jbc.M212147200
    [15] Körner M, Stöckli M, Waser B, etal. GLP-1 receptor expression in human tumors and human normal tissues: potential for in vivo targeting. J Nucl Med, 2007, 48(5): 736-743.
    [16] Gotthardt M, Lalyko G, van Eerd-Vismale J, etal. A new technique for in vivo imaging of specific GLP-1 binding sites: first results in smallrodents. Regul Pept, 2006, 137(3): 162-167.
    [17] Lu Y, Dang H, Middleton B, et al. Noninvasive imaging of islet grafts using positron-emission tomography. Proc Natl Acad SciUSA, 2006, 103(30): 11294-11299. doi: 10.1073/pnas.0603909103
    [18] Lu Y, Dang H, Middleton B, et al. Long-term monitoring of transplanted islets using positron emission tomography. Mol Ther, 2006, 14(6): 851-856.
  • [1] 李阳沈聪袁网丁晖李艳段小艺杨健张卫善 . 服用二甲双胍与胰岛素的糖尿病患者肠道摄取18F-FDG的比较. 国际放射医学核医学杂志, 2022, 46(5): 277-283. doi: 10.3760/cma.j.cn121381-202106005-00181
    [2] 李军刘兴党 . 分子显像在糖尿病及其并发症中的应用研究进展. 国际放射医学核医学杂志, 2022, 46(3): 174-179. doi: 10.3760/cma.j.cn121381-202007026-00159
    [3] 赵倩李娟 . 糖尿病冠状动脉粥样硬化性心脏病的发病机制及核素心肌灌注显像的研究进展. 国际放射医学核医学杂志, 2007, 31(3): 132-135.
    [4] 樊孝廉舒毅曾春平靳仓正鲁胜男古炎发车莉莉张爱芳99Tcm-MIBI门控心肌灌注显像在2型糖尿病无症状心肌缺血患者中的价值. 国际放射医学核医学杂志, 2016, 40(3): 171-174. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2016.03.002
    [5] 朱灿胜 . 放射性核素显像在糖尿病足诊治中的应用. 国际放射医学核医学杂志, 2000, 24(4): 145-147.
    [6] 武志芳 . SPECT心肌灌注显像对糖尿病心肌缺血损伤的研究. 国际放射医学核医学杂志, 2004, 28(3): 105-108.
    [7] 赵红光蔡露龚守良 . 低剂量辐射与糖尿病. 国际放射医学核医学杂志, 2006, 30(1): 59-62.
    [8] 段小艺李淼王黎李宏利赵周社郭佑民 . 阿尔茨海默病PET正电子药物应用与研究进展. 国际放射医学核医学杂志, 2014, 38(5): 318-322. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2014.05.010
    [9] 宋书扬韩旭汪蕾闫朝武方纬 . 核素心肌灌注/代谢显像与心脏磁共振成像评价缺血性心脏病心肌活力的对比研究. 国际放射医学核医学杂志, 2024, 48(1): 38-45. doi: 10.3760/cma.j.cn121381-202308010-00386
    [10] 王振光王洋洋 . PET/CT显像在肝细胞肝癌诊断中的研究进展. 国际放射医学核医学杂志, 2015, 39(2): 175-179. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4114.2015.02.016
    [11] 冯柳吴爽金晨涛田梅 . 生长抑素受体显像剂在神经内分泌肿瘤中的临床研究进展. 国际放射医学核医学杂志, 2021, 45(6): 376-382. doi: 10.3760/cma.j.cn121381-202102027-00043
  • 加载中
计量
  • 文章访问数:  1770
  • HTML全文浏览量:  517
  • PDF下载量:  2
出版历程
  • 收稿日期:  2010-04-11
  • 刊出日期:  2010-07-25

胰岛β细胞的分子核医学显像进展

基金项目:  上海市教委重点学科建设基金 S30203

摘要: 糖尿病是严重威胁人类健康的常见病和多发病。糖尿病主要是由于胰岛β细胞选择性破坏或胰岛β细胞分泌胰岛素迟缓和胰岛素抵抗而使胰岛素相对不足所致。β细胞的数量只有减少50%~60%时才会出现相关的症状。由于胰腺位置较深,β细胞含量少,目前临床诊断主要采用有创性方法,且难于进行早期诊断。因此,通过无创性的方法进行β细胞相关代谢疾病的早期诊断,越来越受到人们的关注,影像学诊断也就成了关注焦点,但是如何进行β细胞数量和功能的评估仍是目前影像学诊断面临的重要课题。

English Abstract

  • 糖尿病是严重威胁人类健康的常见病和多发病。目前, 我国糖尿病患者将近4000万人, 位居世界第二位。糖尿病不仅给患者本人造成痛苦, 也给其家庭和社会带来沉重的负担。

    糖尿病以高血糖为标志, 是由于胰岛β细胞选择性破坏或β细胞分泌胰岛素迟缓及胰岛素抵抗而使胰岛素分泌不足所致。β细胞的数量只有减少50%~60%时才会出现相关的症状。由于胰腺位置较深, β细胞含量少, 所以目前对β细胞量的检测是通过胰岛素分泌能力的测定来替代的, 但是血清胰岛素水平并不能精确反映β细胞量。因此, 如何通过无创性的方法早期进行β细胞量和功能的评估, 是目前分子影像学所面临的重要课题之一[1-2]。本文就胰岛β细胞疾病的分子核医学显像的进展进行综述。

    • 特异的靶向放射性核素显像剂是实现分子核医学显像的基础, 因此寻找β细胞特异性结合的显像剂是目前所面临的重要挑战之一。Sweet等[3]进行了β细胞显像剂的筛选, 共筛选出8种化合物, 体外实验表明, 其中格列本脲(glibenclamide)及氟二苯硫卡巴腙(fluorodithizone)与β细胞特异性结合率最高, 但所有化合物与β细胞结合的量均不超过非β细胞的2倍, 因此, 达不到进行β细胞显像的基本要求; 动物显像表明, 3H-格列本脲及18F-氟二苯硫卡巴腙显像均未见胰腺特异性摄取。

      目前, 在格列本脲结构基础上, 已合成数十种化合物。用筛选出的两种化合物18F-氟乙氧基-5-溴格列本脲(18F-fluoroethoxy-5-bromoglibenclamide)和18F-氟乙氧基-5-碘格列本脲进行了正常及糖尿病鼠的显像, 结果显示, 胰腺放射性摄取稍高于脑, 但低于周围器官[4]。Schneider等[5]18F-氟乙氧基-5-溴格列本脲进行正常人胰岛β细胞显像的尝试发现, 肝脏摄取明显增高, 增高约10倍; 而且血液清除低, 血本底较高, β细胞不能显示, 主要原因是绝大多数显像剂与血浆白蛋白结合[6]

    • 胰腺是一个受神经支配的周围器官, 胰岛β细胞和神经内分泌细胞有很多相似的功能。因此, 神经显像剂也被用于β细胞显像。Clark等[7]通过结合突触前囊泡的乙酰胆碱转运体的放射性配基18F-fluorobenzyltrozamicol进行了哺乳动物的PET, 结果可清楚显示胰腺。尽管神经显像剂用于测定胰岛β细胞数量和功能具有潜在价值, 但还需要进一步的研究。

      囊泡单胺转运体2(vesicular monoamine transporter 2, VMAT2)在中枢神经系统多巴胺神经末梢和胰岛β细胞上表达, 但在胰腺外分泌组织和其他腹部器官不存在[8]。宾夕法尼亚大学Kung等[9]18F-氟丙基-(+)-二氢四苯喹嗪(18F-fluoropropyl-(+)-dihydrotetrabenazine)对正常鼠胰岛β细胞行PET, 结果显示胰腺显影明显, 认为它是有潜力的胰岛β细胞检测显像剂。但Eriksson等[10]最近进行了18F-氟乙基-(+)-二氢四苯喹嗪(18F-fluoroethyl-(+)-dihydrotetrabenazine)结合猪胰岛β细胞特性的体内外研究, 结果表明, 尽管18F-氟乙基-(+)-二氢四苯喹嗪与体外胰岛组织VMAT2具有较高的结合特异性, 但与外分泌组织也有较高的不可取代的结合, 由于示踪剂的代谢及脱卤作用, 将严重低估对VMAT2的表达及质量。

    • 细胞膜受体特异的单克隆抗体早已应用于癌症的分子靶向诊断和治疗。尽管有学者进行125I标记单克隆抗体胰岛β细胞显像的研究, 但研究显示, 通过抗体难以进行β细胞量的SPECT评估[11]

    • 与单克隆抗体相比, 多肽具有更强的组织渗透性和在非靶组织中快速清除的特性, 并且通常对重复用药无免疫原性。

      Exendin-4是一种从美洲毒蜥唾液中分泌出来的胰高血糖素样肽1(glucagon-like peptide, GLP-1)类似物, 由39个氨基酸残基组成, 与人GLP-1有53%的同源性[12]。Exendin-4通过与GLP-l受体作用, 可发挥几乎与GLP-1相同的生理活性, 而由于其缺乏二肽酰肽酶IV的酶解位点, 能抵抗二肽酰肽酶IV的降解, 因而半衰期较长, 可达9.57 h左右[13]。López de Maturana等[14]通过竞争性结合实验研究发现, Exendin-4与GLP-1受体的亲和力比GLP-1更高。因此, Exendin-4被认为是治疗非胰岛素依赖型糖尿病最具潜力的药物。

      Körner等[15]125I-GLP-1(7-36)酰胺对正常组织进行了受体放射自显影观察, 并通过药理学竞争实验证实其特异性, 研究表明, 其在神经垂体表达最明显, 胰岛的表达较腺泡高2倍, 小肠、大肠、乳腺、甲状腺、肾和肺内有少量GLP-1受体表达。Gotthardt等[16]111In标记的GLP-1类似物Exendin-4并通过多针孔准直器SPECT及MRI小动物显像系统, 进行了小鼠及大鼠的体内生物学分布及显像研究, 结果显示, 111In-二乙三胺五乙酸-赖氨酸40-Exendin-4与GLP-1受体特异性表达胃、胰腺、肺、肾上腺和脑垂体。但目前尚未见通过核素标记多肽进行β细胞显像的研究报道。

    • 报告基因显像是无创性的分子影像技术之一, 它是在细胞和分子水平对生物过程进行定量和定性的无创性显像方法, 在生物治疗领域具有独特的应用价值。通过载体将报告基因转导B细胞进行核医学显像, 可以监测移植细胞的存活。

      Lu等[17]通过腺病毒介导突变型单纯疱疹病毒胸苷激酶(mutant herpes simplex virus type 1 thymidine kinase, HSV1-TK)作为报告基因转染人胰岛细胞, 以18F-氟羟甲基丁基鸟嘌呤(18F-fluorohydroxymethylbutylguanine)为显像剂通过PET重复显像来监测移植的胰岛细胞的存活, 发现放射性计数与胰岛细胞数量直接相关, 但腺病毒介导的基因表达短暂; 研究显示, 尽管移植的胰岛细胞在肝内弥散分布, PET仍可清晰显示小鼠肝区放射性达数周, 而且基因转导、显像剂及重复显像均对转导的胰岛细胞无明显的不良作用, 为胰岛移植存活的无创性定量评估奠定了基础。

      考虑到腺病毒介导基因的短暂性及其免疫原性, Lu等[18]构建了重组突变型HSV1-tk基因慢病毒, 感染人胰岛细胞后接种于免疫缺陷小鼠腋下, 通过18F-氟羟甲基丁基鸟嘌呤标记探针进行移植胰岛细胞小动物PET的监测研究, 结果显示, 移植后2~3周, 腋窝处的移植胰岛细胞的放射性摄取下降一半, 此后放射性摄取稳定90 d左右, 提示慢病毒介导的报告基因PET对长期监测胰岛细胞移植是一种可行的方法。

    • 胰岛β细胞显像剂的进展及报告基因显像技术的应用, 为胰岛β细胞疾病的早期临床诊断和胰岛β细胞的移植治疗提供了无创性检测及监测方法。随着该领域研究的进一步深入, 定会对糖尿病的发病机制、早期诊断和探寻新的治疗方法做出重要的贡献。

参考文献 (18)

目录

    /

    返回文章
    返回