长链非编码RNA UCA1对肺腺癌A549细胞糖代谢及侵袭转移的影响

张卉 王姝 李雪娜 李亚明

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长链非编码RNA UCA1对肺腺癌A549细胞糖代谢及侵袭转移的影响

    通讯作者: 李亚明, ymli2001@163.com

The functional role of long non-coding RNA UCA1 in lung adenocarcinoma A549 cells on glucose metabolism, invasion and metastasis

    Corresponding author: Yaming Li, ymli2001@163.com
  • 摘要: 目的 探讨长链非编码RNA(lncRNA)尿路上皮癌胚抗原1(UCA1)在肺腺癌A549细胞中的表达及对糖代谢关键酶和细胞侵袭、转移的影响。 方法 构建lncRNA UCA1沉默及其对照稳定转染的肺腺癌A549细胞系,将小干扰RNA(siRNA)转染细胞分为NC组(阴性对照组,转染siRNA-UCA1序列)和siRNA-UCA1组(转染siRNA-UCA1敲降序列)。采用实时荧光定量PCR、Western blot检测糖代谢相关指标葡萄糖转运蛋白(GLUT)1、己糖激酶(HK)2和丙酮酸激酶(PKM)2水平的变化。采用Transwell实验和划痕实验检测siRNA-UCA1的侵袭和迁移能力。采用18F-氟脱氧葡萄糖(FDG)摄取实验检测siRNA-UCA1的摄取率。计量资料的比较采用t检验。 结果 UCA1在肺腺癌A549细胞中高表达。与NC组相比,siRNA-UCA1组能够抑制GLUT1、HK2和PKM2基因在肺腺癌A549细胞中的表达(t=19.66、5.81、11.98,均P<0.001),且三者的蛋白表达水平明显下降(t=61.35、145.90、88.19,均P<0.001)。与NC组相比,siRNA-UCA1组肺腺癌A549细胞的侵袭能力、迁移运动能力和对18F-FDG的摄取率均明显降低(t=19.43、7.71、5.79,均P<0.05)。 结论 LncRNA UCA1能够抑制糖代谢的关键酶并促进肺腺癌的转移能力,其可能成为肺癌新的诊断指标和治疗靶点。
  • 图 1  qRT-PCR检测3种基因的表达情况

    Figure 1.  qRT-PCR was used to detect the expression of three genes

    图 2  Western blot检测3种蛋白的表达情况

    Figure 2.  Western blot was used to detect the expression of three proteins

    图 3  siRNA-UCA1对肺腺癌A549细胞侵袭能力的影响(结晶紫染色,×400)

    Figure 3.  Effect of siRNA-urothelial carcinoma associated 1 on the invasive ability of lung adenocarcinoma A549 cells(crystal violet staining, ×400)

    图 4  siRNA-UCA1对肺腺癌A549细胞迁移能力的影响(×100)

    Figure 4.  Effect of siRNA-urothelial carcinoma associated 1 on the migration ability of lung adenocarcinoma A549 cells(×100)

    图 5  siRNA-UCA1对肺腺癌A549细胞18F-FDG摄取率的影响

    Figure 5.  Effect of siRNA-urothelial carcinoma associated 1 on the 18F-FDG uptake rate of lung adenocarcinoma A549 cells

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出版历程
  • 收稿日期:  2019-09-02
  • 刊出日期:  2020-07-25

长链非编码RNA UCA1对肺腺癌A549细胞糖代谢及侵袭转移的影响

    通讯作者: 李亚明, ymli2001@163.com
  • 中国医科大学附属第一医院核医学科,沈阳 110001

摘要:  目的 探讨长链非编码RNA(lncRNA)尿路上皮癌胚抗原1(UCA1)在肺腺癌A549细胞中的表达及对糖代谢关键酶和细胞侵袭、转移的影响。 方法 构建lncRNA UCA1沉默及其对照稳定转染的肺腺癌A549细胞系,将小干扰RNA(siRNA)转染细胞分为NC组(阴性对照组,转染siRNA-UCA1序列)和siRNA-UCA1组(转染siRNA-UCA1敲降序列)。采用实时荧光定量PCR、Western blot检测糖代谢相关指标葡萄糖转运蛋白(GLUT)1、己糖激酶(HK)2和丙酮酸激酶(PKM)2水平的变化。采用Transwell实验和划痕实验检测siRNA-UCA1的侵袭和迁移能力。采用18F-氟脱氧葡萄糖(FDG)摄取实验检测siRNA-UCA1的摄取率。计量资料的比较采用t检验。 结果 UCA1在肺腺癌A549细胞中高表达。与NC组相比,siRNA-UCA1组能够抑制GLUT1、HK2和PKM2基因在肺腺癌A549细胞中的表达(t=19.66、5.81、11.98,均P<0.001),且三者的蛋白表达水平明显下降(t=61.35、145.90、88.19,均P<0.001)。与NC组相比,siRNA-UCA1组肺腺癌A549细胞的侵袭能力、迁移运动能力和对18F-FDG的摄取率均明显降低(t=19.43、7.71、5.79,均P<0.05)。 结论 LncRNA UCA1能够抑制糖代谢的关键酶并促进肺腺癌的转移能力,其可能成为肺癌新的诊断指标和治疗靶点。

English Abstract

  • 肺癌是世界范围内致死率较高的恶性肿瘤之一,近年来肺癌在我国的发病率和病死率均高居首位,其主要原因在于肺癌的高侵袭转移能力和高复发率[1]。非小细胞肺癌是肺癌中发病率最高的类型,手术治疗和放化疗是最常用和最基本的治疗手段,但预后依然较差,5年生存率不足17%[2]。因此,研究肺癌的代谢及转移机制在一定程度上能提高肺癌的诊疗效果,进而降低肺癌的病死率。

    在RNA中,大部分为非编码RNA,其中长链非编码RNA(long non-coding RNA,lncRNA)长度一般超过200 bp,且缺乏明显的开放阅读框,因此其不编码蛋白质,但是广泛参与人体生理、病理活动,包括参与或介导肿瘤的发生、发展过程[3-3]。早期研究结果发现,lncRNA尿路上皮癌胚抗原(urothelial carcinoma associated,UCA)1在多种肿瘤细胞中表达上调,降低UCA1的表达可以抑制肿瘤细胞的增殖、转移等生物学行为,调节肿瘤细胞的葡萄糖代谢[4],因此UCA1可作为肿瘤早期诊断、预后监测的新型生物标志物[5-6]

    本研究首先通过检测lncRNA UCA1在肺腺癌A549细胞中的表达,然后体外实验进一步验证lncRNA UCA1在肺腺癌中的作用,旨在进一步揭示肺癌的发生、发展机制,并为lncRNA UCA1作为肺癌新的早期诊断指标及治疗靶点提供证据。

    • 肺腺癌A549细胞购自中国科学院上海生命科学研究院,人正常支气管上皮细胞HBE购自中国科学院细胞库,胎牛血清购自美国CLACK公司,DMEM/F12细胞培养基、青-链霉素双抗和胰蛋白酶均购自美国Hyclone公司,Opti-MEM低血清培养基、Lipofectamine 3000和Trizol试剂均购自美国Invitrogen公司,SYBR Premix Ex Taq Ⅱ试剂盒(RR820A)、PrimeScriptTM RT reagent试剂盒(RR047A)购自日本Takara公司,BCA蛋白浓度测定试剂盒、十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)凝胶快速制备试剂盒购自上海碧云天生物技术公司,抗体均购自美国ABcam公司,Transwell小室购自美国Corning公司。18F-FDG由本科室的美国GE公司的MINItrace 加速器合成,放射化学纯度>95%。Image Lab图像分析系统为美国伯乐公司生产,γ计数器(GC-1500)为安徽中科中佳科学仪器有限公司生产。

    • 人正常支气管上皮细胞HBE培养于含有10%胎牛血清的1640培养基中,肺腺癌A549细胞培养于含10%胎牛血清和1%双抗DMEM/F12完全培养基中,均置于37℃的恒温培养箱中培养(内含5%CO2);然后加1 mL胰蛋白酶消化收集细胞,再用1 mL无双抗的完全培养基中和,重悬为细胞悬液,按1×105个数量接种于六孔板中,待细胞密度约为70%时,进行转染。将小干扰RNA(small interfering,siRNA)转染细胞分为NC组(阴性对照组,转染siRNA-UCA1序列)和siRNA-UCA1组(转染siRNA-UCA1敲降序列),以上序列由上海吉凯公司设计合成。转染24 h后换液,继续培养24 h后用Trizol试剂裂解细胞,用于检测干扰效率。

    • 提取人正常支气管上皮细胞HBE和肺腺癌A549细胞的RNA,进行反转录反应(去除基因组DNA和反转录反应)和实时荧光定量(quantitative real-time,qRT)PCR反应,后者包括预变性95℃ 30 s,反应40个循环,溶解95℃ 5 s、60℃ 30 s、72℃ 5 s、4℃降温30 s等步骤。并以甘油醛-3-磷酸脱氢酶(GAPDH)为内参,通过2−△△CT法计算以上2种细胞的UCA1相对表达量,检测肺腺癌A549细胞的糖代谢相关指标:己糖激酶(hexokinase,HK)2、葡萄糖转运蛋白(glucose transporter protein,GLUT)1和丙酮酸激酶(pyruvate kinase isozymes M,PKM)2的表达量,以β-actin为内参。引物序列如下:

      GAPDH引物序列:

      正向5′-GAGTCAACGGATTTGGTCGT-3′

      反向5′-TTGATTTTGGAGGGATCTCG-3′

      β-actin引物序列:

      正向5′-GCAGAAGGAGATCACTGCCCT-3′

      反向5′-GCTGATCCACATCTGCTGGAA-3′

      UCA1引物序列:

      正向5′-CTCTCCATTGGGTTCACCATTC-3′

      反向5′-GCGGCAGGTCTTAAGAGATGAG-3′

      GLUT1引物序列:

      正向5′-ATACTCATGACCATCGCGCTAG-3′

      反向5′-AAAGAAGGCCACAAAGCCAAAG-3′

      HK2引物序列:

      正向5′-GGCAATGAAACCAAAGCCAGGAG-3′

      反向5′-GGAAGGAGGAGCCAGAAGCAACC-3′

      PKM2引物序列:

      正向5′-GGGTTCGGAGGTTTGATG-3′

      反向5′-ACGGCGGTGGCTTCTGT-3′

    • 肺腺癌A549细胞转染48 h后,先用胰蛋白酶消化,再用无血清培养基稀释,以2×105个的数量加入上室中。在下室加入600 μL含20%血清的DMEM/F12培养基,将上室放入后继续培养。8 h后取出上室,用4%的多聚甲醛固定30 min,结晶紫染色30 min,用PBS进行清洗后,擦去上室内残留细胞,晾干拍照。实验至少重复3次。

      细胞转染48 h后进行划痕实验,用10 µL加样器的枪头垂直于六孔板划一道竖线,PBS清洗1次后进行拍照,更换无血清培养基培养24 h后再进行拍照,尽量选择同一视野。使用Image J软件(http://rsb.info.nih.gov/ij/download.html)测各个时间点细胞未覆盖的面积。

      划痕愈合率(%)=1−(各时间点划痕面积/开始的划痕面积×100%)

    • 肺腺癌A549细胞转染48 h后,用PBS清洗再加入裂解液,冰上裂解30 min,4℃离心(17 000×g)25 min后取上清,进行蛋白浓度测定,电泳仪设置电压为80 V跑电泳,至分离胶和浓缩胶交界处时将电压更改为120 V,至样品跑出即可停止电泳。5%脱脂奶封闭2 h,一抗为HK2(1∶1000)、GLUT1(1∶2000)、PKM2(1∶1000),以β-actin(1∶10000)为内参,4℃ 过夜后,第2天用TBST(Tris buffered Tween)缓冲液清洗3次,每次15 min。山羊抗兔二抗(1∶5000)室温孵育2 h,TBST清洗3次后进行化学发光法检测和曝光拍照,结果用image-Lab图像分析系统测定各条带的灰度值,计算HK2、GLUT1和PKM2的相对表达量,实验重复3次。

    • 六孔板内未转染的肺腺癌A549细胞每孔加入37 000 Bq的18F-FDG,37℃分别孵育5、15、30、60、90、120 min,计算不同时间点18F-FDG的摄取率,选取摄取率最高的时间点进行后续实验。肺腺癌A549细胞在六孔板内转染48 h后,每孔加入0.296 MBq(8 μCi)/mL的18F-FDG,37℃孵育60 min,吸取上清液后用1 mL的PBS清洗3次。用胰蛋白酶消化细胞,收集后用1 mL的PBS再清洗3次,均加入试管中,最后用γ计数器测量每个试管内的放射性计数,计算细胞对18F-FDG的摄取率:18F-FDG摄取率=细胞内放射性计数/(细胞内放射性计数+上清液放射性计数)×100%。

    • 以上所有实验均重复3次以确保结果的可靠性。采用SPSS20.0软件和GraphPad Prism7.0软件对数据进行统计学分析。符合正态分布的计量资料用均数±标准差表示,方差齐的2组数据的比较采用t检验。P<0.05为差异有统计学意义。

    • 用qRT-PCR检测人正常支气管上皮细胞HBE和肺腺癌A549细胞中UCA1的表达时发现,UCA1在A549细胞中的表达显著升高,是在HBE中表达量的4.26倍,且差异有统计学意义(t=16.26,P<0.001)。

    • qRT-PCR结果显示,UCA1的siRNA转染能够抑制肺腺癌A549细胞GLUT1、HK2和PKM2基因的表达(图1)。进一步的Western blot结果表明,与NC组相比,siRNA-UCA1组的GLUT1、HK2和PKM2蛋白的表达水平均明显下降,且差异均有统计学意义(图2)。

      图  1  qRT-PCR检测3种基因的表达情况

      Figure 1.  qRT-PCR was used to detect the expression of three genes

      图  2  Western blot检测3种蛋白的表达情况

      Figure 2.  Western blot was used to detect the expression of three proteins

    • Transwell侵袭实验结果显示,siRNA-UCA1组和NC组细胞穿过数量分别为(12.0000±0.5774)、(127.7000±5.9250)个(图3),说明下调UCA1时,肺腺癌细胞的侵袭能力与对照组相比显著降低(t=19.43,P<0.001)。

      图  3  siRNA-UCA1对肺腺癌A549细胞侵袭能力的影响(结晶紫染色,×400)

      Figure 3.  Effect of siRNA-urothelial carcinoma associated 1 on the invasive ability of lung adenocarcinoma A549 cells(crystal violet staining, ×400)

    • 划痕实验结果显示,经过24 h的爬行,与NC组相比,siRNA-UCA1组细胞的迁移运动能力明显降低(图4)。

      图  4  siRNA-UCA1对肺腺癌A549细胞迁移能力的影响(×100)

      Figure 4.  Effect of siRNA-urothelial carcinoma associated 1 on the migration ability of lung adenocarcinoma A549 cells(×100)

    • 未转染的肺腺癌A549细胞在5、15、30、60、90、120 min时对18F-FDG的摄取率分别为1.95%、2.28%、2.55%、2.86%、2.40%、2.34%,60 min时的摄取率达到峰值,因此选择60 min作为测定的时间点。转染后的肺腺癌A549细胞测定结果如图5显示,siRNA-UCA1组对18F-FDG的摄取率较NC组明显降低,且差异有统计学意义。

      图  5  siRNA-UCA1对肺腺癌A549细胞18F-FDG摄取率的影响

      Figure 5.  Effect of siRNA-urothelial carcinoma associated 1 on the 18F-FDG uptake rate of lung adenocarcinoma A549 cells

    • 目前针对恶性肿瘤的治疗手段包括手术切除并行同步放化疗,但整体预后仍不理想[7]。因此,研究肺癌病变的确切机制和发现新的关键靶点至关重要,对开展肺腺癌患者的个体化治疗和改善预后具有重要意义。

      代谢重编程是肿瘤细胞的标志之一,并且与细胞生长调节的过程密切相关[8]。FDG是一类葡萄糖类似物,可以反映葡萄糖的代谢情况。近年来随着PET类的医学成像设备被临床广泛应用,FDG可以用于肿瘤的诊断、分期和治疗监测。由于细胞在快速增殖侵袭过程中所需的能量会急剧增加,可加快肿瘤发生发展的进程[9-10],因此研究肿瘤的代谢调节过程有利于寻找更好的治疗靶点。而lncRNA最开始被认为是基因转录的副产物,不存在生物学功能[11]。但近年来的研究结果表明,lncRNA与肿瘤的发生发展有密切关系,已成为基因组学新的研究热点[12-13]

      目前,有研究结果表明UCA1在肺癌细胞中呈高表达状态,并且可以促进小细胞肺癌的生长、侵袭和迁移[14-15],与本研究的结果一致。除此之外,本研究还通过qRT-PCR及Western blot实验检测UCA1在A549细胞糖代谢中的关键酶,发现下调UCA1后,GLUT1、HK2和PKM2表达均显著降低,抑制细胞糖代谢的过程,这在国内外尚无报道。我们用Transwell侵袭实验和划痕实验进行生物学行为的检测,结果表明,下调UCA1后会使A549细胞的侵袭和迁移能力显著下降,但具体机制仍需要进一步探索。有研究者发现,UCA1在胰腺癌中可以通过Hippo通路促进胰腺癌细胞侵袭和转移[16];对肝细胞癌的研究发现,UCA1可以通过与miR-203结合,激活转录因子Snail 2,促进肝癌细胞的增殖和侵袭[17]。因此,UCA1沉默后,相应糖代谢指标表达降低,抑制肿瘤的能量代谢,使肿瘤侵袭转移能力下降。

      综上所述,本研究发现UCA1可以影响糖代谢的关键酶,并且促进肺腺癌A549细胞的迁移和侵袭,这提示其可能在肺癌发生过程中起到癌基因的作用,有望成为肺癌治疗的潜在新靶点。本研究结果为进一步深入探讨UCA1对促进肺癌细胞恶性生物学特征的分子机制奠定了基础。由于我们只进行了体外实验,尚存在不足之处,比如UCA1与临床病理因素及预后的关系等都值得进一步研究。接下来将进行机制研究,深入探讨UCA1通过哪种信号通路对糖代谢指标进行调节,同时加上体外动物实验进行验证,以得到更明确的治疗效果。

      利益冲突 本研究由署名作者按以下贡献声明独立开展,不涉及任何利益冲突。

      作者贡献声明 张卉负责试验的设计与实施、论文的撰写;王姝负责数据的分析;李雪娜、李亚明负责论文的审阅与修订。

参考文献 (17)

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